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Dusp22敲除调控小鼠睾丸间质细胞发育机制的研究

申报人:夏琳惠 申报日期:2025-03-27

基本情况

2025创新项目
Dusp22敲除调控小鼠睾丸间质细胞发育机制的研究 学生申报
创新训练项目
医学
基础医学类
学生来源于教师科研项目选题
二年期
睾丸间质细胞(Leydig cells)是男性睾丸中具有关键功能的细胞,在合成睾酮、调控精子发生、睾丸间质环境稳定、性腺发育与男性第二性征的维持方面起非常重要的作用。双特异性磷酸酶 (DUSP)家族是一种MAPK 信号通路负调控因子,参与生殖系统的调控过程,但其中DUSP22 蛋白调控睾丸功能的具体机制尚不清楚。本项目前期通过构建了 Sf1-cre 小鼠,敲除了该小鼠性腺体细胞的 Dusp22 基因。我们发现 Dusp22 在小鼠睾丸间质细胞中特异性表达,同时 Dusp22 敲除小鼠出现了睾丸重量减轻,精子数量减少,睾丸结构紊乱。针对以上研究结果,项目后续将进一步利用 Cyp17a1-cre 小鼠特异性敲 除睾丸间质细胞 Dusp22 基因,探索不同时期 Dusp22 调控睾丸间质细胞的发育过程以及对睾丸功能的作用的分子机制。本研究将充实 DUSP22 调控睾丸功能的具体机制,为相关生殖疾病的精准 治疗提供新线索。
1、2022年10月以来跟随指导教师在学校公共科研平台进行生殖及相关疾病的研究,对该领域的相关研究有了初步了解,已基本掌握生殖系统发育相关知识,熟练掌握小鼠饲养、基因型鉴定、细胞培养免疫组化等实验技术。

2、以第三参与人的身份参与2024年国家级大学生创新训练项目。

3、以第五作者的身份参与SCI论文一篇,已投稿《Systems Biology in Reproductive Medicine》,目前在审稿中。Shanshan Qin, Ziming Zhu, Shenmin Lv, Zhipeng Guo, Linhui Xia, Xiaoyu Gong, Jinxiang Yuan, Kai Meng, Jianping Zhu. Potential mechanism of male infertility-mitochondrial quality control disorder.(under review)

4、以第四作者身份参与SCI论文一篇“Mechanism of Wnt/β-catenin signaling pathway in regulating cardiovascular disease”目前已撰写完成,正在润色中。

5、以第四作者身份在《国际心血管病杂志》撰写中文综述一篇。秦一丁, 侯晓晴, 公晓雨, 夏琳惠, 鲁雪仪, 夏勇, 栗方芝。“线粒体结构和功能障碍在扩张型心肌病中的作用”。
1.2023-2025年主持山东省自然科学基金青年项目,“WT1 基因可变剪接WT1(+/-KTS)在卵巢上皮细胞恶性转化中的作用及机制研究”(ZR2022QC188);
2.2022-2024年主持贺林院士新医学临床转化工作站科研基金项目“WT1基因对不同卵巢癌细胞系生物学行为的影响及分子机制研究”(JYHL2021MS10);
3.2022-2025年参加国家自然科学基金委员会面上项目“牛供核细胞过表达miR-101促进牛克隆胚胎重编程机制研究”(32172936);
4.2016-2020年参加国家转基因重大专项“高产优质转基因肉牛新品种培育(2016ZX08007002)。
1.依托学校实验室资源,对本项目提供设备上的支持;
2.对本项目的项目组成员进行组织协调上的支持;
3.对本项目提供较为前沿的学术观点的指导;
4.对项目实施过程中技术上的难题进行指导。
校级

项目成员

序号 学生 所属学院 专业 年级 项目中的分工 成员类型
夏琳惠 临床医学院(附属医院) 临床医学(眼视光医学方向) 2022 实验设计、数据分析、 载体构建
王文煊 口腔医学院 口腔医学(本科) 2023 HE 染色,免疫组织化学 染色
郝可扬 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科) 2024 细胞体外培养、蛋白水平分析
李庆新 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科) 2023 小鼠饲养和与建造模型
王祥宇 临床医学院(附属医院) 临床医学(省属公费医学生) 2023 动物解剖

指导教师

序号 教师姓名 所属学院 是否企业导师 教师类型
李瑞琨 医学影像与检验学院
王晓梅 基础医学院

立项依据

1.探究Dusp22基因敲除对小鼠睾丸功能的影响;
2.探究Dusp22基因对小鼠睾丸间质细胞发育的影响,并明确其调控间质细胞与睾丸功能的具体机制。
一、Dusp22基因缺失对小鼠睾丸间质细胞谱系分化的影响
1.Dusp22基因缺失对小鼠睾丸发育和生育力影响的研究
前期我们通过CRISPR-Cas9技术对野生型(WT)小鼠Dusp22基因插入LoxP酶切位点,形成Dusp22flox/flox小鼠。接下来我们将Dusp22flox/flox雌性与Sf1-cre雄性交配以产生Dusp22flox/+;Sf1-cre雄性小鼠,并将获得的雄性小鼠与Dusp22flox/flox雌性小鼠交配以产生Dusp22flox/flox;Sf1-cre睾丸性腺体细胞特异性敲除Dusp22小鼠模型。并初步发现,与WT小鼠相比,Dusp22敲除小鼠睾丸体积变小,精子数量减少。为明确Dusp22敲除对睾丸发育和生育功能的具体影响,本部分研究如下:
(1)在Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠8周龄的时候(小鼠已性成熟),以WT雄鼠为对照,每只雄鼠与两只正常雌鼠合笼饲养,连续记录3个月内雌鼠受孕率、产仔数及子代存活率,记录子代雄鼠的睾丸下降情况(出生后21天观察阴囊内睾丸是否到位),统计分析Dusp22敲除对雄鼠生育能力的长期影响。
(2)收集8周龄Dusp22flox/flox;Sf1-cre及WT小鼠的基础数据(体重、睾丸重量、附睾重量),分离睾丸和附睾组织,利用苏木精-伊红(HE)染色观察睾丸组织曲细精管的形态,通过精子计数仪检测附睾精子总数。
2.Dusp22基因缺失对小鼠间质细胞发育的影响
前期我们对睾丸组织的间质细胞特异性标记物(CYP17A1)、支持细胞特异性标记物(SOX9)和生殖细胞特异性标记物(MVH)进行免疫组织化学分析(IHC),以观察睾丸各类细胞的定位变化情况。通过研究我们发现,支持细胞的极性发生紊乱,而生殖细胞和睾丸间质细胞定位基本不变。为进一步探究DUSP22对睾丸间质细胞发育的影响,本部分研究如下:
(1)通过免疫组化(IHC)和Westernblot检测间质细胞标志物(HSD3B、LHR)及类固醇合成关键酶(StAR、CYP11A1)的表达水平,结合ELISA测定血清睾酮浓度,评估睾酮合成功能变化。
(2)分离Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠及WT小鼠原代睾丸间质细胞进行体外培养,通过CCK-8 实验检测细胞活力,JC-1染色评估线粒体膜电位,并测定培养基中睾酮水平,验证Dusp22缺失对间质细胞功能的直接影响。
3.Dusp22基因对睾丸间质细胞发育影响机制的研究
DUSP22作为MAPK通路的负调控磷酸酶,可能通过抑制MAPK过度活化维持性腺体细胞前体向间质细胞的正常分化。本部分旨在解析Dups22缺失导致分化阻滞的分子机制。
(1)MAPK动态活性检测:
分离野生型(WT)与Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠的性腺前体细胞,在体外诱导分化过程中,通过Westernblot分析MAPK通路磷酸化水平(p-ERK、p-JNK、p-p38),明确Dups22缺失导致MAPK持续活化的关键时间窗;检测MAPK下游转录因子(如c-Fos、c-Jun、ATF2)的核定位及DNA结合活性(EMSA或ChIP-qPCR),关联分化进程。
(2)分化相关靶基因筛选:
对WT和Dusp22flox/flox;Sf1-cre的性腺前体细胞进行RNA-seq分析,重点关注MAPK通路下游与间质细胞分化相关的基因(如HSD3B、StAR、CYP11A1)及负反馈调控因子(如DUSP家族成员、Sprouty蛋白);并验证候选基因。通过RT-qPCR和免疫荧光检测分化标志物(HSD3B、STAR)的表达水平,同时分析增殖/凋亡相关基因(如Mcl-1、p53)的变化,明确分化阻滞是否与细胞命运改变相关。
二、Dusp22基因缺失调控小鼠睾丸间质细胞功能维持的影响机制
1.Dusp22基因缺失对小鼠睾丸发育和生育力影响的研究
我们准备利用Cre-Loxp技术构建睾丸间质细胞特异性敲除Dusp22Dusp22flox/flox;Cyp17a1-cre)小鼠模型并和WT小鼠进行对比,探讨Dusp22敲除对睾丸发育和生育功能的具体影响,本部分研究如下:
(1)在Dusp22flox/flox;Cyp17a1-cre小鼠8周龄的时候(小鼠已性成熟),以WT雄鼠为对照,每只雄鼠与两只正常雌鼠合笼饲养,连续记录3个月内雌鼠受孕率、产仔数及子代存活率,记录子代雄鼠的睾丸下降情况(出生后21天观察阴囊内睾丸是否到位),统计分析Dusp22敲除对雄鼠生育能力的长期影响。
(2)收集8周龄Dusp22flox/flox;Cyp17a1-cre及WT小鼠的基础数据(体重、睾丸重量、附睾重量),分离睾丸和附睾组织,利用苏木精-伊红(HE)染色观察睾丸组织曲细精管的形态,并通过精子分析(CASA)观察精子运动速度(VCL、VSL)、活率、顶体反应能力并检测睾丸曲细精管的直径和形态。
2.Dusp22基因缺失对小鼠间质细胞功能的影响
为进一步解析Dusp22缺失对间质细胞发育和功能的调控作用,本部分研究如下:
(1)通过免疫组化(IHC)和Westernblot检测间质细胞标志物(HSD3B、LHR)及类固醇合成关键酶(StAR、CYP11A1)的表达水平,结合ELISA测定血清睾酮浓度,评估睾酮合成功能变化。
(2)通过Ki67染色检测间质细胞增殖活性,通过TUNEL染色分析细胞凋亡率,明确Dusp22 敲除对间质细胞增殖与存活的调控作用。
(3)分离Dusp22flox/flox;Cyp17a1-cre小鼠及WT小鼠原代睾丸间质细胞进行体外培养,通过CCK-8实验检测细胞活力,JC-1染色评估线粒体膜电位,并测定培养基中睾酮水平,验证Dups22 缺失对间质细胞功能的直接影响。
3.Dusp22基因对睾丸间质细胞功能影响机制的研究
DUSP22作为MAPK信号通路的负调控磷酸酶,可能通过去磷酸化作用影响间质细胞存活及激素合成。基于第二部分结果,本部分研究如下:
(1)MAPK信号通路的关键靶基因筛选与验证分离。将原代间质细胞进行体外培养,进行RNA-seq筛选影响MAPK信号通路的关键靶基因(Mcl-1、p53、GADD45、NF-κB、STAT3)并通过RT-PCR进行验证;利用Westernblot验证MAPK通路关键蛋白(p-ERK、p-JNK、p-p38)及下游靶点(如c-Fos、c-Jun)的激活状态。
(2)关键靶基因下调:
使用小RNA干扰已筛选出的关键靶基因,探究Dusp22敲除对睾丸间质细胞发育的影响。
(3)功能回复实验:
Dusp22敲除的原代间质细胞中,分别加入MAPK通路抑制剂(U0126、SP600125)或STAT抑制剂(Stattic),检测细胞凋亡率(AnnexinV/PI流式)及睾酮合成能力(ELISA)是否恢复;构建Dusp22催化活性突变体(如C110S),过表达至Dups22敲除细胞,观察其对MAPK通路活性及细胞表型的挽救效应。



(3)国、内外研究现状和发展动态
1、睾丸间质细胞的发育过程及其对睾丸发育的影响
睾丸间质细胞(Leydig cell,LC)是位于生精小管间质间隙中的睾丸体细胞,主要功能是产生类固醇激素[1]。在哺乳动物中,LC主要分为两类:胎儿睾丸间质细胞(Fetal Leydig cell,FLC)和成人睾丸间质细胞(Adult Leydig cell,ALC)。FLC起源于中肾间充质和体腔上皮[2]。在人类受精后的6-7周中,随着睾丸索的建立,共同体细胞分化为胚胎/胎儿间质祖细胞,并逐渐分化为间质(包括 Leydig)谱系,FLC在第七周时出现,在核受体类固醇生成因子1(SF-1)的作用下,持续产生睾酮,驱动雄性生殖道的形成[3-5]。出生后,FLC数量逐渐减少,产生的睾酮直到青春期前到达最低水平[6]。但部分FLC持续存在,并分化为ALC和肾小管周围肌样细胞的共同祖细胞[3,7]。并在青春期早期,随着睾丸生态位成熟,共同祖细胞分化形成成熟的睾丸间质细胞和肾小管周围肌样细胞[8]。ALC由睾丸间质干细胞发育而来,经历祖细胞、未成熟间质细胞最终成为成熟睾丸间质细胞[9]。在未成熟间质细胞时期,垂体分泌的黄体生成素(LH)通过激活间质细胞中 LHCGR受体,促使其分化为成熟的成年睾丸间质细胞并分泌雄激素[10]
间质细胞及其分泌的睾酮对多种发育事件起至关重要的作用。在胚胎期,FLC分泌的胰岛素样因子3(INSL3)通过激活睾丸引带上RXFP2受体,引导睾丸从腹腔下降至阴囊,而RXFP2的突变是隐睾症和男性不育的原因之一[11]。同时有实验在睾丸间质细胞衰竭 (LCF)的成年小鼠中发现睾酮含量降低,导致生精小管结构的破坏,精子发生受阻,并伴随外生殖器发育障碍与性功能的减退[12,13]。此外,有实验发现在ALC被清除的大鼠睾丸中,免疫细胞(如巨噬细胞、树突状细胞和淋巴细胞等)增殖活性显著增加,数量增多,睾丸免疫微环境被破坏[14]。并且Chi等发现在睾丸缺血再灌注小鼠模型中,巨噬细胞分泌的ROS增加,诱导外源性间质细胞干细胞(Stem Leydig cell,SLC)向巨噬细胞转移并传递线粒体,减少巨噬细胞中IL-1α、TNF-α的表达,恢复了睾酮的表达,保证了睾丸免疫微环境的稳定性和生育力[15]
已有研究发现,SF-1在性腺体细胞中特异性表达,而细胞色素P450家族17亚家族A成员1(CYP17A1)在睾丸间质细胞中特异性表达[16]。因此在本项目中,我们构建Sf1-cre和Cyp17a1-cre小鼠,分别在谱系分化前和谱系维持时特异性敲除Dusp22基因,并探究睾丸间质细胞在睾丸分化不同阶段的发育情况,睾丸间质细胞分化后的功能维持与睾丸功能情况。
2、DUSP家族在生殖系统中的作用
双特异性磷酸酶(DUSP)是一种异质性蛋白磷酸酶,可在单一底物中对酪氨酸/丝氨酸/苏氨酸残基进行去磷酸化,并可通过与底物竞争性结合丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase, MAPK)调控MAPK信号通路,在细胞增殖、分化、凋亡、应激响应等过程中发挥了重要作用[17-21]。大量研究表明,DUSP家族在生殖系统中起调控作用。已有实验发现,LH通过调控Hippo 通路抑制牛颗粒细胞中DUSP6蛋白的表达,调控排卵过程[22,23];而卵泡刺激素(FSH)则通过刺激DUSP6蛋白的表达参与大鼠排卵前期的颗粒细胞增殖过程[24]。这展现了DUSP6在女性排卵过程中的复杂性。研究表明DUSP5 参与卵巢成熟囊性畸胎瘤的发育过程,并且该基因的低表达可能与子宫内膜癌的发生相关[25]。Sun等发现DUSP8和DUSP16可通过调控鸡卵巢颗粒细胞的脂质沉积与孕酮的分泌影响生殖过程[26,27]此外,DSUP家族在雄性生殖系统中也起重要的作用。Pan等发现在雄性小鼠睾丸中,MKP1(DUSP1)通过抑制P38信号通路的激活,维持支持细胞紧密连接相关蛋白的表达,保护血睾屏障,该基因的敲除会导致睾丸免疫稳态失衡,诱导炎症反应导致不育[28]。同时MKP3(DUSP6)参与维持雄性小鼠精母细胞减数分裂和精子细胞的形成,调控雌二醇等激素的分泌调控生育过程[29]
DUSP目前已发现25种亚型,其中DUSP22(亦称JNK通路相关磷酸酶JKAP或JSP-1),属于非典型亚群的DUSP成员[30]。DUSP22的基因位于人类6p25.3染色体上,其编码的蛋白质广泛存在于心脏、骨骼肌、肝脏、胰腺等器官和组织中[31]。其通过调控T细胞受体(TCR)信号通路灭活、JNK信号通路激活、粘着斑激酶(FAK)磷酸化与雄激素受体(AR)的去磷酸化过程,在细胞凋亡、炎症反应、纤维化和肿瘤进展等过程中起到重要作用 [32-35]。最近的研究揭示,DUSP22可抑制酪氨酸介导的黏着斑激酶(FAK)磷酸化[33],直接破坏FAK/occludin/ZO-1蛋白复合物结构完整性,导致血-睾屏障(BTB)中紧密连接与粘附连接功能异常,进而破坏精子发生微环境并诱发雄性生殖功能障碍[36]。这一发现不仅将DUSP22的功能定位拓展至生殖领域,更可以合理推测DUSP22也可能通过其它潜在机制影响睾丸关键细胞(包括但不限于支持细胞、间质细胞),从而调控雄性生育力。然而,目前关于DUSP22在间质细胞中的分子机制及其对生育力的贡献仍属空白。基于上述背景,我们前期通过构建 Dusp22敲除小鼠模型,发现DUSP22在睾丸间质细胞中特异性高表达。这提示其可能通过影响间质细胞核心功能(如睾酮生物合成、激素信号转导)和细胞稳态维持参与雄性生育力调控。因此,在本研究中我们通过进一步检测Dusp22敲除对小鼠睾丸间质细胞的作用,从而为阐明DUSP22在调控雄性生育力的关键分子机制提供全新实验依据。
3.MAPK通路在睾丸间质细胞发育过程及其对男性生育力的影响
为进一步了解Dusp22敲除小鼠对睾丸功能的影响机制,新进研究的关注点为Dusp22敲除小鼠睾丸中的关键信号通路MAPK对睾丸间质细胞发育、睾丸结构功能改变与生育力功能障碍的影响。
研究发现,在喂食高脂饮食(HFD)小鼠的睾丸间质细胞中发现P38 MAPK信号通路磷酸化水平升高,睾酮合成受阻,加速了睾丸间质细胞的衰老[37]。同时,出生前暴露于邻苯二甲酸二(2-乙基己基)酯(DEHP)的雄性小鼠被证明通过上调LC中的JNK和P38 MAPK信号通路,诱导睾丸间质细胞衰老与凋亡,睾丸发育不良,生精小管萎缩,精子活力低下,诱导不育[38]。此外,在六氟丙烯氧化物三聚酸(HFPO-TA)体外处理的小鼠间质细胞系中也发现,ROS表达增加并诱导内质网发生应激的发生,激活了JNK信号通路及其下游的F-box/WD重复结构域蛋白1A(β-TrCP)蛋白表达,降低了间质细胞特异性基因(如INSL3、StAR)并增加caspase-3的表达,诱导睾丸间质细胞死亡[39]。此外,MAPK信号通路对睾丸间质干细胞和祖细胞的发育也有影响。血小板衍生生长因子 BB(BB)通过激活MAPK信号通路,诱导SLC和睾丸间质祖细胞(Leydig progenitor cells,LPC)的增殖,但却降低了间质细胞分化相关基因(Star, Cyp11a1, Hsd3b1, Cyp17a1等)的表达,间质细胞的谱系发育过程被抑制,雄激素分泌受阻[40]
以上研究结果表明,睾丸间质细胞中的MAPK通路会影响睾酮的分泌和睾丸发育过程,调控男性不育。本研究以 Dusp22敲除小鼠的睾丸为研究对象,通过探究Dusp22基因缺失后的小鼠睾丸间质细胞MAPK通路对间质细胞发育过程和睾丸功能产生的影响及分子机制,进一步揭示DUSP22在维持男性生育力中发挥的重要作用(如图 1),为之后生殖系统相关疾病的治疗提供相关理论支持。
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图1 Dusp22敲除调控睾丸间质细胞的发育过程及功能的机制研究
(本图由figdraw绘制)
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  1.创新点
本项目首次研究了Dusp22敲除后调控小鼠睾丸间质细胞发育机制的影响与具体机制,从新的角度进一步填补并扩展丰富了DUSP22对生殖系统的调控作用,将为相关生殖疾病的精准治疗提供新线索,具有理论和应用的创新性。
2.项目特色
男性生殖障碍一直是生殖医学所研究的重点问题,且DUSP家族在生殖功能障碍方面有一定联系,但DUSP22在生殖领域的研究几乎空白。本实验将使用敲除Dusp22的小鼠睾丸,从间质细胞发育过程及睾丸功能的作用方面探索DUSP22通过MAPK信号通路影响男性生殖系统的机制,或为治疗男性的不孕问题提供理论支撑。 
(5)技术路线、拟解决的问题及预期成果
1.技术路线
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(本图由figdraw绘制)
2.拟解决的问题
本项目拟解决的科学问题是揭示Dusp22敲除小鼠对睾丸间质细胞发育和睾丸功能的影响,并进一步探究DUSP22通过MAPK信号通路调控睾丸间质细胞的机制,为日后男性生殖系统相关疾病提供新策略。
3.预期研究成果
(1)明确Dusp22敲除对小鼠睾丸间质细胞发育和睾丸功能的影响;
(2)明确MAPK信号通路调控睾丸间质细胞的具体机制;
(3)发表学术论文1-2篇。
(6)项目研究进度安排
本项目计划实施年限是 2 年,实施时间是 2025.06-2027.06
2025.06-2026.06:
(1)研究 Dusp22调控睾丸间质细胞MAPK 通路的具体机制;
(2)研究Dusp22敲除对小鼠睾丸间质细胞发育过程和间质细胞功能及睾丸功能作用的影响。
2026.07-2026. 12:
(1)筛选并验证Dusp22敲除小鼠的睾丸间质细胞中影响睾丸功能的关键靶基因;
(2)研究关键靶基因在Dusp22敲除小鼠的睾丸间质细胞中影响睾丸功能的具体机制。
(3)尝试发现 DUSP22 是否还通过调控其他的生理过程来影响生育力,旨在发现更多机制,
丰富DUSP22在生殖系统中的作用。
2027.01-2027.06:
整理数据,撰写并发表论文。
(1)与本项目有关的研究积累
① Dusp22在小鼠睾丸不同时期的表达和定位
为了确定Dusp22在睾丸中的表达和定位,我们对胚胎发育后(E)12.5、16.5和出生后周数(W)1、3、8的小鼠睾丸进行免疫荧光(IF)染色和荧光原位杂交(FISH)技术,结果证实,在胚胎期、新生期和成年期小鼠睾丸的睾丸间质细胞中检测到DUSP22抗体的免疫反应信号。此外,我们没有观察到DUSP22在E12.5,E16.5或1W、3W、8W睾丸的支持细胞中的表达。此外,DUSP22蛋白在E12.5,E16.5或1W、3W、8W睾丸的生精细胞中未检测到。(图2)
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        图2:Dusp22基因在小鼠发育不同阶段的表达示意图
② 构建DUSP22flox/flox;Sf1-cre小鼠
为了探究Dusp22敲除对雄性小鼠睾丸间质细胞发育的影响,本项目前期构建了Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠。根据Ensembl数据显示,Dusp22共有5个转录本。根据Dusp22基因的结构,我们分析了鼠源基因敲除位点,采用CRISPR-Cas9技术在Dusp22-202(ENSMUST00000095914.6)转录本的外显子exon2两端插入loxp位点。Dusp22-202转录本包含7个exons,翻译起始位点ATG位于exon1,编码205aa(图3A)。通过体外构建载体,将CRISPR-Cas9和Donor载体显微注射到C57BL/6JGpt小鼠受精卵中,移植获得F0小鼠,经PCR和测序验证正确的F0代阳性小鼠与C57BL/6JGpt小鼠交配可获得稳定遗传的F1代阳性小鼠模型,即Dusp22flox/flox表型。我们接下来通过使用Cre-Loxp系统有条件的删除小鼠睾丸间质细胞中的Dusp22。将Dusp22flox/flox雌性与Sf1-cre雄性交配以产生Dusp22flox/+;Sf1-cre雄性小鼠。将Dusp22flox/+;Sf1-cre雄性小鼠与Dusp22flox/flox雌性小鼠交配以产生Dusp22flox/flox;Sf1-creDusp22-CKO)。Dusp22flox/floxDusp22flox/+Dusp22flox/+;Sf1-cre小鼠做为阴性对照(图3B)。
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图3:Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠的构建。A:CRISPR-Cas9技术对Dusp22基因进行基因编辑原理示意图;B:Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠电泳分析示意图
③ WT小鼠和Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠睾丸表型鉴定和体重分析
本项目前期已经成功构建Dusp22flox/flox;Sf1-cre雄鼠,为了探究Dusp22敲除对睾丸发育的影响,我们分别测量了8周龄野生型和Dusp22flox/flox;sf1-cre小鼠的体重,并分别摘取了睾丸和附睾进行体重和睾丸重量分析。结果显示,与WT 雄鼠相比,Dusp22flox/flox;Sf1-cre雄鼠睾丸和附睾体积减小,小鼠体型变小,体重减轻。(图 4A-C)。
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图4:8周龄WT 小鼠与 Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠睾丸和体重表型。(A)(B):8周龄WT 小鼠和Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠睾丸和附睾组织图。(C)8周龄WT 小鼠与 Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠体型对比。
④ WT小鼠和Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠睾丸发育和精子发生的情况
为进一步探究Dusp22对睾丸发育和精子发生的影响,本项目前期分离了8周龄WT和Dusp22flox/flox;Sf1-cre雄性小鼠的睾丸组织,并进行HE染色。通过镜检我们发现,Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠曲细精管内细胞数量减少,睾丸结构略微杂乱无章,小管中生精细胞排列松散(图5)。
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图5:8周龄WT和Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠睾丸组织HE染色(400×)
⑤ WT小鼠和Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠支持细胞的极性情况
为进一步探索Dusp22对睾丸支持细胞极性的影响,我们分别对8周龄WT和Dusp22flox/flox;Sf1-cre雄性小鼠睾丸的生殖细胞(MVH)、支持细胞(SOX9)和间质细胞(CYP17A1)进行免疫组织化学染色。结果显示与WT相比,Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠生殖细胞和睾丸间质细胞没有明显变化,本应排列在曲细精管管周的睾丸支持细胞向管内迁移,排列在在生殖细胞周围,支持细胞极性的出现紊乱(图6)。
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图6:8周龄WT和Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠睾丸组织免疫组织化学染色。A:8周龄WT和Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠睾丸组织间质细胞(CYP17A1)免疫组织化学染色;B:8周龄WT和Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠睾丸组织生殖细胞(MVH)免疫组织化学染色;C:8周龄WT和Dusp22flox/flox;Sf1-cre小鼠睾丸组织支持细胞(SOX9)免疫组织化学染色(400×)。
(2)已取得的成绩
申请者基于指导教师的研究工作和指导意见提出此课题,指导老师长期从事生殖系统发育和疾病机制研究,近五年来以第一作者、通讯作者发表 SCI 论 文 10余篇,代表性论著如下:
1.Research progress on the fanconi anemia signaling pathway in non-obstructive azoospermia. Front Endocrinol (Lausanne). 2024;(通讯作者、中科院二区, 影响因子 3.9)
2. Mitochondrial Quality Control in Ovarian Function: From Mechanisms to Therapeutic Strategies(Reprod Sci.). 2024(第一作者、中科院三区,影响因子2.6)
3.Study of the uptake mechanism of two small extracellular vesicle subtypes by granulosa cells. (Anim Reprod Sci.) 2024(第一作者,中科院二区,影响因子2.2)
本项目负责人前期以第五作者身份已撰写一篇题目为“Potential mechanism of male infertility-mitochondrial quality control disorder”的男性不育相关综述,现正处于审稿阶段。该综述中作者系统总结了线粒体动力学和线粒体质量控制在男性不育中的相关作用机制及治疗潜力。通过文献的查阅以及综述的撰写已对男性睾丸各种细胞功能与发育过程以及男性不育相关知识进行了深入了解,为本项目中睾丸间质细胞相关实验奠定理论及思路基础。
3.已具备的条件,尚缺少的条件及解决方法
本项目主要依托济宁医学院公共科研平台和实验动物中心,完全具备开展本项目的所有仪器设备;前期已购买Dusp22基因敲除小鼠,并成功建立了扩繁体系;该项目组成员已基本掌握开展本项目的实验技术。实施本项目的实验条件均已具备。

经费预算

开支科目 预算经费(元) 主要用途 阶段下达经费计划(元)
前半阶段 后半阶段
预算经费总额 20000.00 购买试剂及论文出版 16000.00 4000.00
1. 业务费 4000.00 0.00 4000.00
(1)计算、分析、测试费 0.00 0.00 0.00
(2)能源动力费 0.00 0.00 0.00
(3)会议、差旅费 0.00 0.00 0.00
(4)文献检索费 0.00 0.00 0.00
(5)论文出版费 4000.00 论文出版费用 0.00 4000.00
2. 仪器设备购置费 0.00 0.00 0.00
3. 实验装置试制费 0.00 0.00 0.00
4. 材料费 16000.00 试剂、耗材、小鼠饲养 16000.00 0.00
结束