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PDK2通过JAK/STAT3信号通路调控MDSCs影响 Con A诱导的自身免疫性肝炎

申报人:于睿涵 申报日期:2025-03-27

基本情况

2025创新项目
PDK2通过JAK/STAT3信号通路调控MDSCs影响 Con A诱导的自身免疫性肝炎 学生申报
创新训练项目
医学
基础医学类
学生来源于教师科研项目选题
二年期
自身免疫性肝炎(Autoimmune Hepatitis, AIH)是以肝脏免疫异常激活为特征,由T细胞介导的肝实质进行性损伤性疾病。尽管其发病机制涉及遗传易感性、环境触发及免疫调节失衡等多因素互作。近年研究表明,髓源性抑制细胞(Myeloid-Derived Suppressor Cells, MDSCs)介导的免疫抑制调控在维持肝脏免疫稳态中发挥关键作用。前期研究证实,肝脏MDSCs的局部募集与功能活化可显著缓解AIH病理进程,但其代谢调控机制尚未阐明。代谢重编程是免疫细胞功能表型可塑性的核心驱动力。本团队前期发现,丙酮酸脱氢酶激酶2(Pyruvate Dehydrogenase Kinase 2, PDK2)作为糖代谢氧化磷酸化的关键限速酶,可通过调控单核/巨噬细胞等髓系细胞的能量代谢模式,决定其促炎或抑炎功能极化。然而,在AIH微环境中,PDK2是否通过JAKTAT3信号通路调控MDSCs代谢-功能偶联,进而影响AIH疾病进展,仍是亟待解决的科学问题。本项目有助于从新的角度揭示MDSCs的调控机制,为AIH治疗提供新的靶点。
从2023年9月跟随指导老师进行相关课题的研究,学习理论知识,阅读相关文献,能熟练进行小鼠鉴定、PCR、ELSIA、Western Blot等常用实验技术的操作,为本项目的研究打下了坚实的理论和实践基础。
主持山东省自然科学基金面上项目和济宁医学院贺林院士新医学临床转化工作站科研基金各一项。
支持
校级

项目成员

序号 学生 所属学院 专业 年级 项目中的分工 成员类型
于睿涵 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科) 2023 统筹协调整个项目,并进行动物实验
马天宝 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科) 2023 动物实验 (ELISA、氧化应激检测等)
杨卓群 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科) 2024 动物实验 (动物饲养、取样、PCR等)
冯兰婷 康复医学院 康复治疗学(本科) 2024 动物实验 (AIH模型的构建、取样)
徐心怡 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科-临床医学院) 2022 体外实验 (MDSCs的体外培养、检测)
赵静 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科) 2023 体外实验 (MDSCs的体外培养、检测)

指导教师

序号 教师姓名 所属学院 是否企业导师 教师类型
李春霞 基础医学院

立项依据

  1.明确PDK2参与AIH的发生发展
     解析在AIH发生发展中,PDK2表达的变化。

  2.探讨PDK2对MDSCs的调控及其作用机制。
     检测PDK2是否调控MDSCs的分化及功能,并探讨其作用机制。

  3.明确PDK2-MDSCs轴在AIH进程中的功能作用
    通过药理学抑制PDK2活性,干预Con A诱导的AIH小鼠模型,验证PDK2通过JAK/STAT3信号通路调控MDSCs的分化及功能影响肝脏免疫微环境稳态,进而减轻肝炎,为人们研究PDK2在AIH发病中的作用提供一定的理论依据,同时为临床治疗AIH提供有效的靶点。
  1.小鼠AIH模型中肝组织中PDK2表达水平的变化
    1.1 构建Con A诱导的小鼠AIH模型
    1.2 检测AIH小鼠肝组织中PDK2 mRNA及蛋白的表达水平

  2. PDK2抑制剂抑制PDK2活性后对AIH小鼠病情的影响
    2.1 构建Con A诱导的小鼠肝炎模型,确定PDK2抑制剂的最适给药浓度
    2.2 观察PDK2活性抑制后AIH小鼠生存率的变化
    2.3 检测PDK2活性抑制后AIH小鼠相关炎症指标的变化
         2.3.1 血清中炎症细胞因子IL-6、TNF-α、IL-12 和 IL-1β等水平的变化
         2.3.2 血清中谷草转氨酶(AST)、谷丙转氨酶(ALT)活性
         2.3.3 观察肝脏组织病理变化
         2.3.4 检测肝脏细胞凋亡情况
    2.4 通过观察不同浓度PDK2抑制剂对AIH小鼠相关炎症指标的影响,分析PDK2抑制剂对小鼠的影响是否具有浓度依赖性,检测指标同2.3

  3.探讨PDK2调控AIH小鼠肝炎的具体机制
    3.1 体内研究
        Con A诱导的肝炎小鼠给予抑制剂抑制PDK2活性后,检测脾脏、肝脏中MDSCs的数量,在动物水平上探讨PDK2是否通过调控MDSCs影响AIH小鼠病情。
    3.2 体外研究
         3.2.1 检测不同浓度PDK2抑制剂对细胞活力的影响,确定PDK2抑制剂体外的用药浓度
         3.2.2 检测PDK2抑制剂对体外诱导小鼠骨髓来源的MDSCs分化及功能的影响。
         3.2.3探讨PDK2影响MDSCs分化及功能的信号通路。
       体外诱导小鼠骨髓来源的MDSCs,PDK2抑制剂处理后提取其总蛋白质,Western blot方法检测JAK/STAT3信号通路的活化情况,检测MDSCs抑制分子Arg1的蛋白表达水平。ELISA方法检测MDSCs分化后的IL-10和TNF-α的分泌情况,探讨PDK2是否通过JAK/STAT3信号通路影响小鼠MDSCs的分化及功能。  
       以上研究在细胞、分子水平上探讨PDK2调控MDSCs分化及功能的机制。
    3.3验证实验
       使用中和抗Gr-1抗体消耗AIH小鼠内部MDSCs,观察PDK2抑制剂对AIH小鼠肝炎的影响,进一步验证PDK2通过JAK/STAT3信号通路调控MDSCs影响AIH的作用机制。  
        自身免疫性肝炎(autoimmune hepatitis,AIH)是由免疫介导的慢性进展性肝脏疾病,如不及时治疗,可进一步进展为肝硬化甚至肝衰竭,其诊断一般基于血清生化和肝脏组织学[1]。AIH发病机制复杂,涉及T 细胞、巨噬细胞和树突状细胞等多种免疫细胞,通过炎症级联反应导致肝炎[2]。AIH全球性分布,可发生在任何年龄,迄今为止,其确切发病机制尚未完全阐明。

        髓源性抑制细胞(myeloid-derived suppressor cells,MDSCs)是一群来自骨髓的异质性细胞,可通过表达和分泌免疫抑制相关因子发挥强有力的免疫抑制作用,如诱导型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase, iNOS)、精氨酸酶1(Arginase, Arg-1)等[3]。慢性感染、炎症或肿瘤等持续低强度刺激,诱导MDSCs生成,其主要功能是抑制各种类型的免疫反应。MDSCs能够通过产生抑制因子Arg-1和iNOS加速1-精氨酸代谢,抑制T细胞增殖[4]。同时,免疫微环境中TGF-β、IL-1、IL-2、IL-10等细胞因子可诱导MDSCs激活并释放活性氧和一氧化氮,从而抑制T细胞介导的免疫应答[5]。越来越多的研究表明,MDSCs与急慢性肝炎,肝纤维化,肝癌及肝脏移植耐受等多种肝脏疾病密切相关。肝内MDSCs通过抑制M1巨噬细胞极化,在肝脏缺血再灌注损伤期间对肝内炎症和组织损伤表现出增强的抑制功能[6]。肝脏活化态C激酶1受体缺乏症可通过髓源性抑制细胞预防暴发性肝炎[7]。通过上调免疫微环境中的MDSCs可减轻AIH的肝炎[8]。越来越多的研究证实,MDSCs介导的免疫抑制调控是维持肝脏免疫稳态的关键环节。

        近年来,免疫细胞的代谢重编程成为研究的热点。与正常骨髓细胞相比,MDSCs表现出更高的糖酵解活性[9, 10],并大量消耗葡萄糖。这种代谢特征与MDSCs中葡萄糖转运蛋白表达的增加密切相关[10, 11]。值得注意的是,MDSCs内的葡萄糖浓度较髓系前体细胞呈现明显升高,这与其前体细胞的代谢状态形成鲜明对比[11, 12]。这些发现不仅揭示了MDSCs固有的代谢改变,而且强调了通过操纵这种代谢依赖性来实现潜在的治疗交叉点。由于MDSCs严重依赖于糖酵解,抑制该代谢通路可有效调控其分化过程并削弱免疫抑制功能。MDSCs中糖酵解的过度激活不仅会导致葡萄糖剥夺,还会在肿瘤微环境内形成免疫抑制环境[12]。因此,糖代谢重编程是调节MDSCs炎症启动的核心事件,可作为炎症疾病新的干预靶点。

        在能量代谢过程中,丙酮酸脱氢酶复合物(pyruvate dehydrogenase complex, PDC)作为守门蛋白在细胞中起到调节氧化磷酸化和糖酵解平衡的作用(图1)。正常细胞中,PDC将丙酮酸分解为乙酰辅酶A(CoA)进入三羧酸 (tricarboxylic acid, TCA)完成氧化磷酸化,当PDC活性被抑制时,氧化磷酸化途径受阻,丙酮酸在细胞质中发生糖酵解,继而被乳酸脱氢酶 (lactatedehydrogenase, LDH)代谢为乳酸[13-15]。对PDC起到抑制调控作用的主要是丙酮酸脱氢酶激酶 (pyruvate dehydrogenase kinases, PDKs)。多种肿瘤因子可诱导PDKs活性上调,抑制线粒体中PDC活性,导致糖酵解途径激活,促进肿瘤细胞的生长和增殖[13]。研究表明,抑制PDKs活性可以有效逆转这一生理过程,起到增加肿瘤细胞耗氧量、减少乳酸生成、诱导肿瘤细胞凋亡、调节肿瘤组织微环境的作用,达到直接或协同杀伤肿瘤的目的[16-18]。除此之外,有研究指出抑制PDKs活性对肥胖症、2型糖尿病等代谢性疾病的治疗也能产生积极作用[19]。PDKs主要分布在细胞线粒体基质中,已发现的人PDKs包括 PDK1~4四个亚型。其中,PDK2广泛分布在心脏、肾脏、肝脏等多种器官内。我们前期研究发现,在LPS诱导的小鼠内毒素休克炎症中PDK2表达增加,PDK2通过调控巨噬细胞和树突状细胞的代谢而影响小鼠内毒素休克的炎症变化。然而,目前PDK2在自身免疫性肝炎中的表达变化及其对肝炎的影响研究较少。
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 图 1丙酮酸代谢及PDK的表达示意图

        本课题组前期研究证实了在AIH发生发展过程中PDK2在肝脏中表达增加。MDSCs是维持肝脏免疫稳态的关键细胞,代谢重编程作为调控免疫细胞功能的新范式,AIH中PDK2表达的变化是否与MDSCs的活化及其功能有联系?PDK2是否通过糖代谢重编程影响MDSCs而参与AIH的炎症反应呢?仍是亟待解决的科学问题。

        髓系细胞的极化是多种细胞因子相互作用的复杂过程,受到多种信号分子及其通路的调控。一般认为,信号转导及其转录激活因子(STAT)通路在髓系细胞极化过程中起着关键性作用 [20]。MDSCs为髓源性细胞,其极化很可能也受STAT通路的调控。综上所述,我们提出假说,PDK2通过JAK/STAT3信号通路调控MDSCs影响Con A诱导的自身免疫性肝炎(图 2)。

       为了验证上述假设,本课题拟在前期工作基础上进行深入研究,力争解决以下实验问题:(1)明确PDK2在AIH中所扮演的角色;(2)阐明PDK2调控MDSCs分化及功能的作用机理;(3)探讨PDK2是否通过JAK/STAT3信号通路调控MDSCs分化及功能参与AIH的发病。本课题组有望从新的角度揭示MDSCs调控机制,寻找AIH治疗的新靶点,并为AIH的临床治疗提供理论依据。
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图 2 PDK2通过JAK/STAT3信号通路调控MDSCs影响Con A诱导的自身免疫性肝炎假说图

主要参考文献

[1] KOMORI A. Recent updates on the management of autoimmune hepatitis [J]. Clin Mol Hepatol, 2021, 27(1): 58-69.
[2] LOHSE A W, SEBODE M, BHATHAL P S, et al. Consensus recommendations for histological criteria of autoimmune hepatitis from the International AIH Pathology Group: Results of a workshop on AIH histology hosted by the European Reference Network on Hepatological Diseases and the European Society of Pathology: Results of a workshop on AIH histology hosted by the European Reference Network on Hepatological Diseases and the European Society of Pathology [J]. Liver Int, 2022, 42(5): 1058-69.
[3] HEGDE S, LEADER A M, MERAD M. MDSC: Markers, development, states, and unaddressed complexity [J]. Immunity, 2021, 54(5): 875-84.
[4] LEINWAND J, MILLER G. Regulation and modulation of antitumor immunity in pancreatic cancer [J]. Nat Immunol, 2020, 21(10): 1152-9.
[5] ZHOU L, MIAO K, YIN B, et al. Cardioprotective Role of Myeloid-Derived Suppressor Cells in Heart Failure [J]. Circulation, 2018, 138(2): 181-97.
[6] ZHANG S, SUN Z, CHEN Z, et al. Endothelial YAP/TEAD1-CXCL17 signaling recruits myeloid-derived suppressor cells against liver ischemia-reperfusion injury [J]. Hepatology, 2025, 81(3): 888-902.
[7] LIU G, WANG Q, DENG L, et al. Hepatic RACK1 deficiency protects against fulminant hepatitis through myeloid-derived suppressor cells [J]. Theranostics, 2022, 12(5): 2248-65.
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[12] KIM J, CHOI J Y, MIN H, et al. Exploring the Potential of Glycolytic Modulation in Myeloid-Derived Suppressor Cells for Immunotherapy and Disease Management [J]. Immune Netw, 2024, 24(3): e26.
[13] ZHANG S L, HU X, ZHANG W, et al. Development of pyruvate dehydrogenase kinase inhibitors in medicinal chemistry with particular emphasis as anticancer agents [J]. Drug Discov Today, 2015, 20(9): 1112-9.
[14] STACPOOLE P W. Therapeutic Targeting of the Pyruvate Dehydrogenase Complex/Pyruvate Dehydrogenase Kinase (PDC/PDK) Axis in Cancer [J]. J Natl Cancer Inst, 2017, 109(11).
[15] BOBROVNIKOVA-MARJON E, HUROV J B. Targeting metabolic changes in cancer: novel therapeutic approaches [J]. Annu Rev Med, 2014, 65: 157-70.
[16] KERY M, ORAVCOVA N, RADENKOVIC S, et al. Pyruvate dehydrogenase kinase 1 and carbonic anhydrase IX targeting in hypoxic tumors [J]. Neoplasma, 2018, 66(1): 63-72.
[17] FILIMONOVA M V, PODOSINNIKOVA T S, SAMSONOVA A S, et al. Comparison of Antitumor Effects of Combined and Separate Treatment with NO Synthase Inhibitor T1023 and PDK1 Inhibitor Dichloroacetate [J]. Bull Exp Biol Med, 2019, 168(1): 92-4.
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[19] PARK S, JEON J H, MIN B K, et al. Role of the Pyruvate Dehydrogenase Complex in Metabolic Remodeling: Differential Pyruvate Dehydrogenase Complex Functions in Metabolism [J]. Diabetes Metab J, 2018, 42(4): 270-81.
[20] CAO Y, WANG J, JIANG S, et al. JAK1/2 inhibitor ruxolitinib promotes the expansion and suppressive action of polymorphonuclear myeloid-derived suppressor cells via the JAK/STAT and ROS-MAPK/NF-kappaB signalling pathways in acute graft-versus-host disease [J]. Clin Transl Immunology, 2023, 12(2): e1441.
(1)“免疫细胞的代谢及其调节”是近年发展而成的一个新研究领域。大量实验研究证实,免疫应答通常伴随某些免疫细胞在短时间内大量增殖、激活,而活化的免疫细胞有赖于改变其能量代谢方式而分化、扩增及发挥功能。因此,通过调控免疫细胞的能量代谢方式,可影响免疫应答的产生、效应及转归,并干预某些免疫病理过程的发生和发展。在能量代谢途径的选择中,丙酮酸脱氢酶复合物作为守门蛋白在细胞中起到调节氧化磷酸化和糖酵解平衡的作用,而对PDC起到抑制调控作用的主要是PDK。本项目提出PDK2通过 JAK/STAT3信号通路调控MDSCs影响AIH的发生发展。这是首次深入研究PDK2在AIH发病中的作用;

(2)本项目为人们研究PDK2在AIH发生发展中的作用提供新的线索,从新的角度揭示AIH发病的机制;

(3)本研究的实验设计具有系统性,从细胞水平、动物水平多方面展开研究,验证提出的假设,拟以PDK2为靶点,探索AIH的发病机制及治疗策略,为今后AIH的临床治疗提供理论依据。
技术路线如下图:

                                                             
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拟解决的问题
  1. PDK2是否参与AIH的发生、发展?
  2. PDK2在AIH发病过程中扮演怎样的角色?
  3. PDK2是否通过JAK/STAT3信号通路调控MDSCs影响AIH的发生、发展,其具体机制是什么?

预期成果
  PDK2在AIH发生发展中表达增高,PDK2可通过STAT信号通路调控MDSCs而影响AIH的发生发展,可以以PDK2为靶点,为AIH的治疗提供新的治疗策略。以上研究结果拟在国内外高水平期刊发表学术论文1-2篇,参加国内外学术会议1-2次。
2025.06 - 2025.12
   动物实验:检测小鼠AIH模型中肝肺组织PDK2表达水平变化。PDK2抑制剂抑制PDK2活性后,AIH小鼠肝炎相关指标的变化:ELISA 检测血清中炎症细胞因子IL-6、TNF-α、IL-12 和 IL-1β水平的变化;HE染色观察肝脏组织病理变化;TUNEL染色检测肝脏组织细胞凋亡情况;流式细胞术检测脾脏、肝脏中MDSCs数量。

2026.01- 2026.12
   体外实验:诱导小鼠骨髓来源的MDSCs,观察PDK2表达量的变化。PDK2抑制剂预处理小鼠骨髓来源的MDSCs,流式细胞术检测MDSCs分化情况;提取其总蛋白质,Western blot方法检测JAK/STAT3信号通路的活化情况,ELISA方法检测IL-10和TNF-α的分泌情况,探讨PDK2是否通过 JAK/STAT3通路影响小鼠MDSCs的分化。
   使用中和抗Gr-1抗体消耗AIH小鼠内部MDSCs,观察PDK2抑制剂对AIH小鼠肝炎相关指标的影响,进一步验证PDK2通过JAK/STAT3信号通路调控MDSCs影响AIH的作用机制。

2027.01 -2027.12
   总结分析以上实验结果,撰写SCI论文。
(1)课题组做了大量的前期工作,预实验结果良好。前期预实验结果如下:

1)PDK2在AIH小鼠肝组织中表达增加

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图1. Con A诱导的AIH小鼠肝组织中PDK2的表达

2)PDK2活性抑制后可明显提高Con A诱导的AIH小鼠生存率
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图2. 腹腔注射PDK2抑制剂(PDK2-IN)后Con A诱导的AIH小鼠生存率

3)PDK2活性抑制后可明显降低Con A诱导的AIH小鼠血清中谷丙转氨酶(ALT)和谷草转氨酶(AST)水平
                                                       

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 图3. 腹腔注射PDK2抑制剂(PDK2-IN)后Con A诱导的AIH小鼠血清中ALT和AST水平

4)PDK2活性抑制后可明显减轻Con A诱导的AIH小鼠肝组织中细胞凋亡
                                                               summernote-img
图4. 腹腔注射PDK2抑制剂(PDK2-IN)后Con A诱导的AIH小鼠肝组织细胞凋亡
        本课题组依托实验室为济宁医学院“泰山学者”海外特聘专家熊化保教授实验室,依托于山东省教育厅批准成立的免疫学和分子医学研究所,具有分子和细胞生物学研究必备的仪器和设备:细胞培养间、流式细胞仪、激光共聚焦显微镜、PCR 仪、电泳仪、酶标仪、低温高速离心机、超低温冰箱以及清洁级动物实验房等,为本项目的实施提供了有力的保障。
        课题组指导老师能对本项目进行具体指导,课题组具备良好的梯队,成员包括22级及23级本科生等。课题组成员一直跟随指导老师进行科学研究,具备免疫学、分子生物学和动物实验相关技术,操作技能娴熟,作为参与者发表了PDK2相关的SCI文章两篇。目前尚无缺少的条件。

经费预算

开支科目 预算经费(元) 主要用途 阶段下达经费计划(元)
前半阶段 后半阶段
预算经费总额 20000.00 业务费与材料费 15000.00 5000.00
1. 业务费 5000.00 版面费 0.00 5000.00
(1)计算、分析、测试费 0.00 0.00 0.00
(2)能源动力费 0.00 0.00 0.00
(3)会议、差旅费 0.00 0.00 0.00
(4)文献检索费 0.00 0.00 0.00
(5)论文出版费 5000.00 版面费 0.00 5000.00
2. 仪器设备购置费 0.00 0.00 0.00
3. 实验装置试制费 0.00 0.00 0.00
4. 材料费 15000.00 实验动物的购置、原材料、试剂、药品等消耗品购置费 15000.00 0.00
结束