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CB1R通过调控PI3K-AKT通路减轻脑缺血再灌注损伤的作用机制研究

申报人:张兆开 申报日期:2025-03-27

基本情况

2025创新项目
CB1R通过调控PI3K-AKT通路减轻脑缺血再灌注损伤的作用机制研究 学生申报
创新训练项目
医学
基础医学类
学生来源于教师科研项目选题
二年期
缺血性脑卒中又称脑梗死,是一种常见的严重危害人类生命健康的脑血管疾病,恢复血流后会引发包括细胞自噬在内的一系列炎症级联反应造成二次损伤,即脑缺血再灌注损伤(Cerebral Ischemia Reperfusion Injury,CIRI)。研究发现激活PI3K-Akt通路可有效缓解CIRI引起的神经炎症和自噬,PI3K-Akt通路是大麻素Ⅰ型受体(CB1R)的下游信号通路之一,激活CB1R可有效缓解小鼠神经功能损伤,减少脑梗死体积。因此推测CB1R可通过调控PI3K-Akt通路减轻神经炎症和细胞自噬缓解脑缺血再灌注损伤。 本项目拟以C57BL小鼠构建大脑中动脉闭塞(MCAO)模型, HMC3细胞建立氧糖剥夺/再灌注(OGD/R)模型,分别模拟体内、体外CIRI。利用WB、qPCR、ELISA、免疫荧光染色等方法,探究CB1R是否通过调控PI3K-Akt通路抑制神经炎症和自噬减轻脑缺血再灌注损伤,分别从细胞和个体层面阐明CB1R调控PI3K-Akt通路对CIRI的保护作用机制。本项目结果将为深入研究CB1R对脑缺血再灌注损伤的保护作用提供一定理论和实验依据。
     本课题负责人自20244月以来,于济宁医学院精神卫生学院神经生物学实验室学习基本实验技能,参与山东省自然科学基金《CBl-CCK1R异源二聚体信号转导及其对神经炎症调控机制的研究》、济宁医学院2021年度贺林院士新医学临床转化工作站科研基金《CB1R在脑缺血再灌注损伤中的保护作用机制研究》。参与并承担项目中动物模型构建、细胞培养与Western Blot等实验,目前已经熟练掌握了多种实验技术,并对大麻素受体、脑缺血再灌注损伤有了一定程度的了解,为本课题的实验设计、开展与实验数据收集与分析等打下了坚实的基础。
2020年主持济宁医学院教师科研扶持基金一项,TNF-a-TNFR信号在脑缺血再灌注损伤中的作用机制研究(JYFC2019KJ009),结题。
2021年主持山东省自然科学基金一项,CBl-CCK1R异源二聚体信号转导及其对神经炎症调控机制的研究(ZR2020QC079),结题。
2022年主持济宁医学院2021年度贺林院士新医学临床转化工作站科研基金项目一项,CB1R在脑缺血再灌注损伤中的保护作用机制研究(JYHL2021MS01),在研。
       指导老师长期从事脑缺血再灌注损伤、信号转导调控机制相关研究,并取得相当丰硕成果,为本项目提供了有力的理论支撑和技术支持。本项目与指导老师在研项目密切相关,并获得指导老师大力支持,基本可以保证本项目顺利完成
校级

项目成员

序号 学生 所属学院 专业 年级 项目中的分工 成员类型
张兆开 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科) 2023 设计实验、MCAO、整理数据和撰写文章
龚凡 精神卫生学院 精神医学(本科) 2024 qRT-PCR 实验、 CCK8 实验
王玉涵 精神卫生学院 精神医学(本科) 2024 细胞OGD/R模型构建
张种田 精神卫生学院 精神医学(本科) 2024 ELISA 实验、 Western Blot 实验
朱俊睿 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科) 2023 免疫荧光染色

指导教师

序号 教师姓名 所属学院 是否企业导师 教师类型
张胜男 精神卫生学院

立项依据

探究CB1R是否减轻CIRI引起的神经炎症和自噬;深入探究CB1R通过调控PI3K-Akt通路缓解MCAO、OGD/R的分子机制。
       本研究选用C57BL小鼠构建大脑中动脉闭塞(Middle cerebral artery occlusion, MCAO)模型并进行再灌注,以HMC3细胞建立OGD/R细胞模型,从体内、体外两个方面模拟CIRI。利用实时荧光定量PCR、Western Blot、ELISA实验和免疫荧光等方法探究CB1R是否通过调控PI3K-Akt信号通路减轻神经炎症和细胞自噬缓解脑缺血再灌注损伤。

2.1 探究在MCAO动物模型中CB1R是否通过激活PI3K-Akt通路减轻神经炎症和自噬缓解CIRI。
2.1.1 MCAO模型组缺血再灌注时间的确定
   以C57BL小鼠建立MCAO模型,通过mNSS神经功能学评分、TTC(2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride)染色来检测大脑中动脉闭塞1h再灌注不同时间点(4h、6h、12h、24h)小鼠神经损伤程度,根据实验结果确定MCAO模型大再灌注时间。

2.1.2 MCAO模型小鼠分组处理,探究CB1R是否缓解MCAO模型小鼠神经炎症和自噬
   将C57BL小鼠随机分为对照组、MCAO组、CB1R激动剂组(设置低、中、高三个剂量,确定CB1R激动剂最适处理浓度)、CB1R抑制剂组,除对照组外,其余均在连续一周腹腔注射激动剂 、抑制剂后进行MCAO和再灌注处理。
   利用qRT-PCR检测小鼠脑组织TNF-α、IL-1β、IL-6、LC3、P62的mRNA表达;Western Blot实验检测各组小鼠CB1R、LC3II、LC3I、Beclin1,P62、TNF-α、IL-1β、IL-6的蛋白表达;采用ELISA试剂盒检测细胞上清液中TNF-α、IL-1β、IL-6含量,采用免疫荧光染色法观察脑组织中小鼠LC3和P62表达和自噬体的形成。

2.1.3 探究CB1R是否通过调控PI3K-Akt信号通路缓解MCAO模型小鼠神经炎症细胞炎症和自噬
   将C57BL小鼠随机分为对照组、OGD /R组、CB1R激动剂(最适浓度)处理组、CB1R抑制剂处理组、PI3K-Akt抑制剂处理组、CB1R激动剂联合PI3K-Akt拮抗剂处理组,除对照组外,其余均在连续一周腹腔注射激动剂、抑制剂后进行MCAO和再灌注处理。
   每组小鼠在进行相应的干预并完成MCAO造模后,进行神经功能学评分,取脑进行TTC染色,取大脑皮层、海马体组织进行检测。利用分子生物学研究方法检测小鼠神经炎症与自噬表达水平(同2.1.2)qRT-PCR检测小鼠脑组织PI3K、Akt的mRNA表达,;Western Blot实验检测各组PI3K、Akt磷酸化水平。

2.2 探究在OGD/R细胞模型中CB1R是否通过调控PI3K -Akt 信号通路抑制神经炎症和自噬缓解胶质细胞缺血再灌注损伤。
2.2.1 模型组氧糖剥夺再灌注时间的确定
   体外培养HMC3细胞,建立OGD/R细胞模型,通过CCK-8(Cell Counting Kit-8)实验检测OGD4h复氧糖不同时间点(2h、4h、6h、8h、12h、24h)细胞的活性,根据实验结果分析确定模型组氧糖剥夺再灌注的时间。

2.2.2 OGD/R细胞模型分组处理,探究CB1R是否缓解由OGD/R引起的神经细胞炎症和自噬
   将正常培养的 HMC3 细胞随机分为对照组、OGD /R组、CB1R激动剂组(分为低、中、高三种剂量,确定CB1R激动剂最适处理浓度)、除对照组、OGD组外,其余实验组均在激动剂、抑制剂预处理。
建立OGD/R模型后利用实时荧光定量PCR(qRT-PCR)技术检测HMC3细胞中中TNF-α、IL-1β、IL-6、LC3、P62在mRNA水平含量的变化;Western Blot实验检测各组小鼠脑组织中的CB1R、LC3II、LC3I、Beclin1,P62、TNF-α、IL-1β、IL-6的蛋白表达。

2.2.3 探究CB1R是否通过调控PI3K-Akt通路缓解由OGD/R引起的细胞炎症和自噬
   将正常培养的 HMC3 细胞随机分为对照组、OGD /R组、CB1R激动剂(最适浓度)处理组、CB1R抑制剂处理组、PI3K-Akt抑制剂处理组、CB1R激动剂联合PI3K抑制剂处理组,除对照组外,其余实验组均在OGD4h后复糖氧时进行激动剂、抑制剂处理。
利用分子生物学研究方法检测各组细胞模型炎症与自噬的表达水平(同2.2.2),qRT-PCR检测 HMC3 细胞PI3K、Akt的mRNA表达;Western Blot实验检测各组PI3K、Akt磷酸化水平。

本项目中应用的相关技术的说明:
   1、TTC染色:2,3,5-氯化三苯基四氮唑(Triphenyltetrazolium Chloride, TTC)是一种无色可溶性化合物,活细胞内的琥珀酸脱氢酶等还原性酶类催化TTC的硝基基团还原,生成稳定的红色甲瓒结晶(Formazan),沉积于线粒体周围,该反应需NAD(H)作为辅酶,且依赖细胞呼吸链的电子传递活性,而坏死或严重缺血细胞因酶系统失活,该反应需NAD(H)作为辅酶,且依赖细胞呼吸链的电子传递活性。死细胞因酶活性丧失无法还原TTC,故不显色,利用此特性可检测小鼠大脑梗死面积,评估小鼠神经损伤程度。
   2、神经功能学评分:小鼠神经功能学评分(通常采用改良神经功能缺损评分,mNSS)通过观察小鼠运动、感觉、平衡及反射等行为学表现进行综合量化评估。评分项目包括肢体对称性、步态、攀爬能力、触觉反应等,得分越高表明神经功能缺损越严重。利用此评分可动态监测脑缺血、脑损伤或神经系统疾病模型小鼠的神经功能变化。
   3、CCK8实验:Cell Counting Kit-8(简称CCK-8)试剂中含有WST-8,在电子载体1-甲氧基-5-甲基吩嗪鎓硫酸二甲酯(1-Methoxy PMS)的作用下CCK8可以被细胞中的脱氢酶还原为具有高度水溶性的黄色甲瓒产物(Formazan dye)。甲瓒产物的数量与活细胞的数量成正比,利用此特性可简便准确地进行细胞增殖和毒性分析。
   4、Western Blot实验:即蛋白质免疫印记实验,是蛋白质分析中最常用的技术之一。通过聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)凝胶电泳将不同分子量大小的蛋白质分离,并将分离的蛋白利用转膜技术转移到PVDF膜上。经过封闭PVDF膜上非特异性结合位点后,以分离的蛋白质作为抗原,与特异的一抗以及与之相对应的标记二抗产生免疫反应后,通过显色反应检测靶蛋白的表达。
   5、实时荧光定量PCR(qRTPCR)实验:实时荧光定量PCR实验是一种分子生物学技术,具有灵敏度高、特异性强、重复性好等优点,广泛应用于基因表达研究、疾病检测等领域。通过荧光信号实时监测PCR扩增过程中DNA或RNA的积累量。该实验采用荧光染料或荧光探针标记mRNA片段,随着PCR循环的增加,荧光信号逐渐增强,与DNA扩增量成正比。通过计算荧光信号达到特定阈值时的循环数(Ct值),可定量分析起始模板的浓度。
   6、酶联接免疫吸附剂测定(Enzyme-Linked Immunosorbnent Assay, ELISA)实验:继免疫荧光和放射免疫技术之后发展起来的一种免疫酶技术。在检测时,受检标本(测定其中的抗原)与固相载体表面的抗体反应。洗涤后加入酶标记的抗体,通过反应结合在固相载体上。加入酶反应的底物后,底物被酶催化成为有色产物,产物的量与标本中受检物质的量直接相关,可根据呈色的深浅进行定性或定量分析。
   7、免疫荧光染色:免疫荧光染色实验是一种利用抗原抗体反应原理对组织或细胞内特定抗原进行定位、定性分析的技术,具有高度的特异性和敏感性等优点。通过将荧光素标记在抗体上,制成荧光抗体,再用其作为探针检测组织或细胞内的相应抗原。形成的抗原抗体复合物在荧光显微镜下发出明亮荧光,从而确定抗原的位置、性质。
      缺血性脑卒中(Ischemia stroke)是指由于椎动脉或颈部动脉病变以及脑血栓而造成的脑部供血不足或中断,脑组织发生缺血性坏死,进而导致的以神经退行性疾病为主要特征的临床综合征。全球疾病负担(GBD)研究显示,世界各地因中风导致的病例和死亡人 数逐年增加[1]。我国脑卒中总体发病率趋于平稳,但由于人口老龄化进程加速与城市化的深入发展,促使我国缺血性脑卒中的新发病例数量呈现上升的态势,每年有 150-200 万新发脑卒中病例,该病症以其高发病率、高致残率及高死亡率,构成全球公共卫生领域内的一个重大挑战。且多数幸存患者伴有运动功能缺陷和多种认知功能缺陷(选择性注意力、工作记忆、信息处理、抽象推理和语言理解)症状[2],严重影响患者预后生活质量,已逐渐成为严重的社会问题。因此,如何促进治疗缺性脑卒中,预防脑缺血再灌注损伤、减轻家庭及社会负担,是一个亟待解决的世界性难题。

3.1 脑缺血再灌注损伤的发病机制及研究进展
   缺血性脑卒中的病理演变如下:当急性脑卒中突然发生时,脑部局部供血不足会引发脑梗死,导致神经功能出现局灶性或全面性的损伤。而在梗死病灶的边缘区域,存在众多形态完整但功能停滞的脑细胞,这片区域被称为缺血半暗带。在缺血的核心区域,往往会发生无法逆转的损伤,而周围的部分受损脑组织则具备潜在的恢复与修复能力。针对缺血性脑血管病的治疗,通常采取使用溶栓药物和机械血栓切除术装置再通和再灌注脑动脉等措施,目的是迅速恢复缺血脑组织的血液供应,进而减轻神经受损程度[2]。然而,恢复血流后可能会触发一种继发性脑功能损伤,即脑缺血再灌注损伤(CIRI)。
   CIRI指的是机体在经历缺血缺氧阶段后,恢复血流反而促使组织进一步受损。CIRI是一个包含多种病理生理机制的复杂过程,涉及能量代谢的紊乱、氧化应激、血小板激活/聚集、补体激活和血脑屏障 (BBB) 破坏、自由基的生成以及自噬相关基因的激活等多个环节[3]。这些机制相互作用,形成一个恶性循环,最终会导致细胞自噬性死亡或坏死。此外,脑细胞主要由神经元和神经胶质细胞组成,其中小胶质细胞是中枢神经系统中具有免疫功能的常驻细胞[4]。在缺血性中风发作时,小胶质细胞会被激活并增殖,同时释放和表达一系列关键的免疫分子,促进炎性细胞的浸润,从而触发炎症反应[5]。尽管炎症反应对于清除病原体和有害物质至关重要,但在脑卒中过程中,过度的炎症反应同样会加剧组织损伤。因此,研发神经保护药物以减轻神经元的再灌注损伤,抑制细胞自噬,促进缺血半暗带向正常脑组织的转变,进而改善患者的行为和认知功能,已成为缺血性脑卒中治疗研究的重点领域和前沿方向。

3.2 大麻素Ⅰ型受体对脑缺血再灌注损伤神经炎症的影响
   大麻素(Cannabinoids),又称花生四烯酸乙醇胺,是天然植物大麻植物中的成分,同时也在动物神经、免疫系统和心血管系统中表达。大麻素发挥作用需要与其特异性受体结合,即大麻素Ⅰ型受体(cannabinoid receptor 1,CB1R)和大麻素Ⅱ型受体(cannabinoid receptor 2,CB2R)。CB1R主要存在于脑、脊髓等中枢神经系统中,在多种中枢神经系统损伤(如中风及创伤性脑损伤)引发的局部神经炎症反应中,CB1受体展现出独特的神经保护特性[6]。通过大麻素介导的刺激作用,CB1R能够经由多通路机制实现神经保护功能:一方面通过抑制IL-β、TNF-α等促炎介质的生成,另一方面可有效抵御急性兴奋性毒性损伤[7]。值得注意的是,CB1R的激活对缺血性损伤具有双重调节作用——在促炎巨噬细胞中可能加剧代谢组织的炎症反应,但在脑血管疾病模型中却显示出显著的保护效应[8]。实验数据显示,使用CB1R激动剂可有效减少全脑缺血后海马神经元凋亡,并显著缩小永久性局灶性脑缺血的梗死范围。病毒介导的CB1R条件性缺失实验进一步验证了这一保护机制:与野生型相比,CB1R缺失小鼠在大脑中动脉闭塞模型中表现出更大的梗死体积及更严重的神经功能障碍[9]。这些证据共同揭示了CB1R通过调节神经-免疫网络,在减轻缺血再灌注损伤中的关键作用,特别是在抑制神经炎症和调控血管/神经细胞功能方面具有重要价值。
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(图1)CB1R介导的促炎反应模型[10]

3.3 PI3K-Akt信号通路治疗脑缺血再灌注损伤机制
       PI3K-Akt信号通路是细胞内调控生存与代谢的核心通路之一,由磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)及其关键效应分子Akt(蛋白激酶B)组成。当细胞膜上的受体酪氨酸激酶(如IGF-1R、EGFR)或G蛋白偶联受体被生长因子、激素等配体激活后,PI3K被招募至膜附近,催化磷脂酰肌醇二磷酸(PIP2)转化为三磷酸肌醇(PIP3)。PIP3作为第二信使,通过其PH结构域将Akt锚定至细胞膜,随后Akt在PDK1和mTORC2的协同作用下发生磷酸化激活。活化的Akt通过磷酸化下游靶蛋白(如mTOR、GSK-3β、Bad、FoxO等)[11],调控细胞增殖、存活、凋亡抑制、糖代谢及血管生成等过程。例如,Akt磷酸化促凋亡蛋白Bad可阻止其与Bcl-2的结合,抑制线粒体凋亡通路;抑制GSK-3β活性可稳定β-catenin,促进细胞存活。此外,该通路与自噬、炎症反应和氧化应激密切相关,是维持细胞稳态和应激适应的重要枢纽[12]。

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(图2)经典PI3K-AKT信号通路

   在CIRI中,缺血阶段因能量耗竭引发神经元钙超载和酸中毒,再灌注时活性氧(ROS)爆发、炎症因子释放及线粒体功能障碍进一步加剧神经元死亡。此时,PI3K-AKT通路的激活可显著增强神经保护效应:活化的AKT通过磷酸化促凋亡蛋白Bad使其失活,阻断线粒体凋亡通路;抑制GSK-3β活性以稳定β-catenin并维持线粒体膜电位,减少细胞色素C释放[13];同时通过激活Nrf2通路促进抗氧化酶(如SOD、HO-1)表达,清除过量ROS,并抑制NADPH氧化酶活性以减轻氧化应激[14]。此外,Akt通过调控NF-κB核转位减少TNF-α、IL-1β等炎症因子生成,抑制小胶质细胞过度活化,从而缓解神经炎症[11]。然而,PI3K-Akt的持续或异常激活亦存在风险:如mTOR过度活化导致自噬失调,加剧蛋白毒性;Akt介导的VEGF表达可能破坏血脑屏障完整性,诱发脑水肿。研究表明,靶向该通路(如使用IGF-1、黄芩苷等激活剂[15])可缩小梗死面积并改善神经功能,但其疗效高度依赖干预时机与剂量——缺血早期激活可最大化抗凋亡和抗氧化效应,而再灌注后期需避免干扰自噬平衡或促血管渗漏[16]。目前研究聚焦于开发时空特异性调控策略(如纳米载药系统)及探索与其他通路(如MAPK、Notch)的交互机制,为临床转化提供新方向。
   由此可见,通过激活PI3K信号通路的激活可有效地抑制由CIRI引起的神经炎症反应,缓解神经组织损伤组织损伤,降低患者的病死率。

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(图3)PI3K-AKT信号通路有关神经炎症反应相关靶点[11]

3.4 缺血再灌注损伤导致细胞自噬
       细胞自噬(Cell Autophagy)作为细胞通过溶酶体降解受损组分以维持稳态的适应性机制,自噬作为一种细胞自我降解机制,通过溶酶体途径清除受损细胞器和异常蛋白,在神经细胞存活与死亡的双向调控中发挥关键作用[17]。自噬的激活由能量代谢、氧化应激及内质网应激等多因素驱动。在CIRI早期,适度自噬通过清除缺血诱导的受损线粒体、抑制活性氧(ROS)积累和维持ATP水平发挥神经保护作用。研究表明,AMPK/mTOR通路是调控自噬的关键枢纽:缺血缺氧时AMPK激活抑制mTORC1活性,解除其对ULK1的磷酸化抑制,从而启动保护性自噬[18];而再灌注后mTOR过度激活则会抑制自噬流,导致错误折叠蛋白堆积和细胞器损伤[17]。此外,Beclin-1作为自噬核心蛋白,其活性受Bcl-2家族蛋白调控——Bcl-2与Beclin-1结合抑制自噬启动,而JNK介导的Bcl-2磷酸化可释放Beclin-1促进自噬[17]。值得注意的是,自噬在CIRI中呈现时空依赖性双重效应:再灌注早期自噬通过降解NLRP3炎症小体前体抑制炎症反应,而晚期自噬流受阻(ATG蛋白缺陷),LC3I在ATG3和ATG7的修饰下转化为LC3II,通过p62/SQSTM1-Keap1-Nrf2通路加剧氧化应激,导致自噬体累积,释放多种炎症因子,加剧缺血再灌注损伤[19]。LC3II与LC3I之间的相对表达量、Beclin、P62表达量成为检测细胞自噬的重要指标,如何抑制细胞自噬效应为治疗脑缺血再灌注损伤提供了新的思路

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(图4)细胞自噬相关机制[17]

       综上所述,CB1R可以通过抑制神经炎症减轻脑缺血再灌注损伤,PI3K-AKT信号通路是CB1R的下游信号通路之一,在CIRI后神经细胞会释放各种炎症细胞因子同时激活细胞自噬机制,加重脑损伤。根据上述信息我们猜测:CB1R通过激活PI3K-AKT信号通路减轻炎症反应、抑制细胞自噬机制从而对脑缺血再灌注损伤起到保护作用。本项目的研究成果将为探索延缓或阻止CIRI神经损伤提供有效策略,有助于探索治疗缺血性脑卒中疾病的新突破口,为治疗此类疾病提供新的方向。

参考文献:
[1] Global burden and strength of evidence for 88 risk factors in 204 countries and 811 subnational locations, 1990-2021: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2021 [J]. Lancet, 2024, 403(10440): 2162-203.
[2] ZHAO Y, ZHANG X, CHEN X, et al. Neuronal injuries in cerebral infarction and ischemic stroke: From mechanisms to treatment (Review) [J]. Int J Mol Med, 2022, 49(2).
[3] KAPANOVA G, TASHENOVA G, AKHENBEKOVA A, et al. Cerebral ischemia reperfusion injury: from public health perspectives to mechanisms [J]. Folia Neuropathol, 2022, 60(4): 384-9.
[4] MATULEVICIUTE R, AKINLUYI E T, MUNTSLAG T A O, et al. Microglial contribution to the pathology of neurodevelopmental disorders in humans [J]. Acta Neuropathol, 2023, 146(5): 663-83.
[5] GONG P, JIA H Y, LI R, et al. Downregulation of Nogo-B ameliorates cerebral ischemia/reperfusion injury in mice through regulating microglia polarization via TLR4/NF-kappaB pathway [J]. Neurochem Int, 2023, 167: 105553.
[6] ZHUANG Q, DAI C, YANG L, et al. Stimulated CB1 Cannabinoid Receptor Inducing Ischemic Tolerance and Protecting Neuron from Cerebral Ischemia [J]. Cent Nerv Syst Agents Med Chem, 2017, 17(2): 141-50.
[7] ABD-NIKFARJAM B, DOLATI-SOMARIN A, BARADARAN RAHIMI V, et al. Cannabinoids in neuroinflammatory disorders: Focusing on multiple sclerosis, Parkinsons, and Alzheimers diseases [J]. Biofactors, 2023, 49(3): 560-83.
[8] BIETAR B, TANNER S, LEHMANN C. Neuroprotection and Beyond: The Central Role of CB1 and CB2 Receptors in Stroke Recovery [J]. Int J Mol Sci, 2023, 24(23).
[9] YANG C, LIU J, WANG J, et al. Activation of astroglial CB1R mediates cerebral ischemic tolerance induced by electroacupuncture [J]. J Cereb Blood Flow Metab, 2021, 41(9): 2295-310.
[10] HAN J H, KIM W. Peripheral CB1R as a modulator of metabolic inflammation [J]. Faseb j, 2021, 35(4): e21232.
[11] JADAUN K S, SHARMA A, SIDDIQUI E M, et al. Targeting Abnormal PI3K/AKT/mTOR Signaling in Intracerebral Hemorrhage: A Systematic Review on Potential Drug Targets and Influences of Signaling Modulators on Other Neurological Disorders [J]. Curr Rev Clin Exp Pharmacol, 2022, 17(3): 174-91.
[12] XU F, NA L, LI Y, et al. Roles of the PI3K/AKT/mTOR signalling pathways in neurodegenerative diseases and tumours [J]. Cell Biosci, 2020, 10(1): 54.
[13] REN B C, ZHANG Y F, LIU S S, et al. Curcumin alleviates oxidative stress and inhibits apoptosis in diabetic cardiomyopathy via Sirt1-Foxo1 and PI3K-Akt signalling pathways [J]. J Cell Mol Med, 2020, 24(21): 12355-67.
[14] WANG L, ZHANG X, XIONG X, et al. Nrf2 Regulates Oxidative Stress and Its Role in Cerebral Ischemic Stroke [J]. Antioxidants (Basel), 2022, 11(12).
[15] YANG S, WANG H, YANG Y, et al. Baicalein administered in the subacute phase ameliorates ischemia-reperfusion-induced brain injury by reducing neuroinflammation and neuronal damage [J]. Biomed Pharmacother, 2019, 117: 109102.
[16] ZHENG T, JIANG T, MA H, et al. Targeting PI3K/Akt in Cerebral Ischemia Reperfusion Injury Alleviation: From Signaling Networks to Targeted Therapy [J]. Mol Neurobiol, 2024, 61(10): 7930-49.
[17] LIU S, YAO S, YANG H, et al. Autophagy: Regulator of cell death [J]. Cell Death Dis, 2023, 14(10): 648.
[18] LIANG H, CHANG X, XIA R, et al. Magnoflorine Attenuates Cerebral Ischemia-Induced Neuronal Injury via Autophagy/Sirt1/AMPK Signaling Pathway [J]. Evid Based Complement Alternat Med, 2022, 2022: 2131561.
[19] AJOOLABADY A, WANG S, KROEMER G, et al. Targeting autophagy in ischemic stroke: From molecular mechanisms to clinical therapeutics [J]. Pharmacol Ther, 2021, 225: 107848. 
       已有研究表明CB1R能减轻由脑缺血再灌注引起的神经功能损伤,另有研究发现PI3K-Akt通路可能会成为缺血性脑卒中治疗的潜在靶点和重要突破口,但对其具体作用机制还有待进一步研究,本项目的研究有利于揭示其作用机制。
       本项目着眼于大麻素受体CB1R在脑缺血再灌注损伤(CIRI)中的调控作用,创新性提出CB1R通过激活PI3K-Akt通路同时抑制神经炎症和过度自噬的“双重保护”假说,在体内、体外实验中通过构建激动剂/抑制剂联用、反向验证(如CB1R激动剂+PI3K抑制剂阻断)的多层次实验体系;结合qRT-PCR、Western Blot、ELISA、免疫荧光、CCK8、行为学检测等实验方法,从分子-蛋白-功能三个维度探究了CB1R是否通过调控PI3K-Akt信号通路减轻由CIRI引起的神经炎症和自噬,为脑缺血再灌注损伤临床研究提供新的实验依据。
       依据实验内容与实验中采用的实验方法,设计如下技术路线:

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5.1技术路线
   注:本项目所使用CB1R激动剂为Win5212-2,CB1R拮抗剂为AM251,PI3K-AKT通路抑制剂为LY294002。此实验所加CB1R激动剂的浓度由前期实验确定,所有药物按说明书以二甲基亚砜(DMSO)为溶剂进行配制。
具体实验路线:

5.2 体内实验
5.2.1 MCAO模型的建立以及再灌注时间的确定
   取8-9周雄性C57BL小鼠适应一周后禁食12h。术前称重,腹腔注射戊巴比妥钠进行麻醉,仰卧位固定于操作台上。备皮后用刀片在颈部正中剪开皮肤约1cm,钝性分离皮下结缔组织和肌肉暴露出颈总动脉(CCA)、颈外动脉(ECA)、颈内动脉(ICA)。结扎CCA和ECA,CCA分叉下方以动脉夹夹闭。CCA结扎处上方做切口,以眼科镊辅助送入备好的线栓。移除动脉夹,轻轻推进线栓,至感受到轻微阻力且进栓深度距CCA分叉处约1.3cm时,停止进栓。Sham组除不插线栓,其余操作同模型组。1小时后取线栓、缝合,分不同时间点(6h、8h、12h、24h)进行再灌注。
   再灌注结束后根据mNSS评分法对小鼠进行神经功能学评分。取整脑,将嗅球和小脑部分切掉,冠状位均匀切成1mm厚脑片置于2%的TTC溶液中,每5min晃动一下,在37°C培养箱中染色30min,吸干染液后用4%多聚甲醛固定液室温下固定20min,拍照后用ImageJ软件对脑梗死体积进行分析。

5.2.2 探究在MCAO动物模型中CB1R是否缓解由CIRI引起的神经炎症和自噬
  将8-9周的C57BL雄鼠随机分为对照组、假手术组、CB1R激动剂组(分低、中、高三个剂量,以确定CB1R激动剂最适处理浓度);CB1R激动剂组在进行MCAO手术前连续3天腹腔注射Win5212-2,假手术组注射等量生理盐水,对照组不做任何处理;
   再灌注结束后,对每组小鼠进行神经功能学评分、TTC染色;通过实时荧光定量PCR(qRT-PCR)检测α、IL-1β、IL-6、LC3、P62的mRNA表达,;Western Blot实验检测各组小鼠CB1R、LC3II、LC3I、Beclin1,P62、TNF-α、IL-1β、IL-6的蛋白表达;;免疫荧光染色检测各组小鼠脑切片中LC3表达和P62表达和自噬体的形成。

5.2.3 探究CB1R是否通过调控PI3K-Akt信号通路缓解MCAO模型小鼠神经炎症细胞炎症和自噬
   将8-9周的C57BL雄鼠随机分为对照组、假手术组、CB1R激动剂组(最适浓度)、CB1R拮抗剂组、CB1R激动剂和PI3K拮抗剂联合处理组。除对照组和假手术组外,其余分组均接受MCAO处理;激动剂、抑制剂处理组在进行MCAO处理前连续三天腹腔注射激动剂及抑制剂,假手术组注射等量生理盐水进行假手术,对照组不做任何处理;
神经功能学评分测量小鼠神经功能学障碍
   a、以mNSS评分法对每组小鼠进行神经功能学评分,从运动功能、感觉功能、反射功能等方面对小鼠进行打分,总分范围为0-18分,分数越高,神经功能障碍越严重。
   b、TTC染色检测小鼠脑梗死面积
取小鼠整脑,经过短时冷冻后将嗅球和小脑部分切掉,冠状位均匀切成1mm厚脑片置于2%的TTC溶液中,每5min晃动一下,在37°C培养箱中染色30min,吸干染液后用4%多聚甲醛固定液室温下固定20min,拍照后用ImageJ软件对脑梗死体积进行分析。
   c、Western Blot实验检测各组CB1R、LC3I、LC3II、P62、Beclin1、TNF-α、IL-1β、IL-6的蛋白表达及PI3K、Akt的磷酸化水平。
取小鼠大脑皮层和海马体体样品进行提取细胞蛋白后用BCA法蛋白浓度测定试剂盒测定样品蛋白浓度,计算上样体积,经10%SDS-PAGE电泳分离,进行电转将蛋白转移到PVDF膜上。5%脱脂奶粉封闭,一抗孵育4℃过夜,二抗常温孵育2h。最后通过电化学发光法(ECL)曝光PVDF膜,用ImageJ2x软件对条带进行图像分析处理。
   d、通过实时荧光定量PCR(qRT-PCR)实验检验各组小鼠脑组织中CB1R、PI3K、Akt、IL-1β、IL-6、TNF-α、LC3、P62的mRNA表达
取各组小鼠大脑皮层组织10-100mg,加入1mL Trizol试剂,在冰冻条件下超声研磨,提取组织总RNA。在NanoDrop 2000超微量紫外分光光度计上检测RNA的浓度。每个样品通过RNA反转录试剂盒反转录成cDNA。根据荧光定量PCR试剂盒加入反应体系,在荧光定量PCR仪运行预变性、变性、退火和延伸反应程序,共40个循环,得到各样品中的循环阈值(Ct),通过2-△Ct计算目的基因在各处理组的相对表达量。
   e、ELISA试剂盒检测小鼠脑组织中IL-6、IL-1β、TNF-α
收集大脑皮层组织,加入裂解液,2000rpm离心15min,然后将50μL的细胞培养上清和50μL的抗体加入试剂盒所含的96孔板中,室温下400rpm摇床中孵育90min,用350μL的洗涤液洗涤3次。随后,向体系中加入100μLTMB缓冲液,在400rpm的摇床中孵育10min。孵育后,用100μL的停止液停止反应。在450nm波长处测量吸光度。
   f、免疫荧光染色检测小鼠神经组织中LC3表达和P62表达和自噬体的形成表达
使用冰冻切片机将小鼠大脑冠状切为30μm切片,将脑切片平放在粘性载玻片上。然后用 0.3% Triton X-100 透化切片 30 min,并用山羊血清封闭 1 h。将脑切片和细胞切片4°C与一抗(小鼠抗GFAP、兔抗 LC3和山羊抗P62)孵育过夜后孵育二抗(FITC 抗小鼠IgG 、Cy3 抗兔 IgG、 AF648抗山羊IgG)。用 SP8 显微镜收集免疫荧光图片,并使用 ImageJ 软件分析免疫荧光密度。用 SP8 显微镜 收集免疫荧光图片,并使用 ImageJ 软件分析免疫荧光密度。

5.3 体外实验
5.3.1 细胞培养和OGD/R模型的建立以及再灌注时间的确定
   将HMC3细胞用细胞培养基(DMEM培养基+胎牛血清+双抗)在37℃含5% CO2的细胞培养箱培养三代以上,即可用于实验研究。用血细胞计数板计数,将细胞按照一定的密度接种到培养板上,待生长至适宜的密度后全量换成无糖的DMEM培养基,于含有5%空气、5%CO2以及90%N2的37℃恒温培养箱内培养,以达到氧糖剥夺的效果。
待氧糖剥夺时间完成后再全量换回常规细胞培养基,37℃普通细胞培养箱内培养。进行首先在OGD4h复氧糖不同时间点(2h、4h、6h、8h、12h)利用CCK8实验检测细胞活性,参照实验结果确定具体再灌注时间,为后续模型组的时间点。

5.3.2 探究CB1R是否缓解由OGD/R引起的炎症和细胞自噬
   将正常培养的HMC3细胞随机分为对照组、OGD/R组、CB1R激动剂处理组(分低、中、高三个剂量加入CB1R激动剂,确定CB1R激动剂最适处理浓度)。除对照组外,其余分组均进行OGD/R处理,其中CB1R激动剂组在OGD4h后复糖氧时进行CB1R激动剂处理。
每组细胞模型进行CCK8实验检测细胞活力;利用实时荧光定量PCR(qRT-PCR)检测CB1R、TNF-α、IL-1β、IL-6、LC3、P62在mRNA水平含量的变化;Western Blot实验检测各组CB1R和LC3I、LC3II、P62、Beclin、TNF-α、IL-1β、IL-6的蛋白表达及磷酸化水平;免疫荧光染色检测细胞模型中LC3、P62表达和自噬体的形成。

5.3.3 探究CB1R是否通过调控PI3K-Akt通路抑制神经炎症和自噬缓解胶质细胞缺血再灌注损伤。
    将正常培养的HMC3细胞随机分为对照组、OGD /R组、CB1R激动剂(最适浓度)处理组、CB1R抑制剂处理组、PI3K-AKT抑制剂处理组、CB1R激动剂和PI3K-AKT拮抗剂联合处理组、DMSO处理组,除对照组、OGD /R组外,在OGD4h后复糖氧时进行激动剂、拮抗剂处理。
    a、Western Blot实验检测各组CB1R、LC3I、LC3II、Beclin1、P62、TNF-α、IL-1β、IL-6的蛋白表达及PI3K、Akt的磷酸化水平。
取细胞样品进行提取细胞蛋白后用BCA法蛋白浓度测定试剂盒测定样品蛋白浓度,计算上样体积,经10%SDS-PAGE电泳分离,进行电转将蛋白转移到PVDF膜上。5%脱脂奶粉封闭,一抗孵育4℃过夜,二抗常温孵育2h。最后通过电化学发光法(ECL)曝光PVDF膜,用ImageJ2x软件对条带进行图像分析处理。
    b、通过实时荧光定量PCR(qRT-PCR)实验检验各组细胞CB1R、LC3、P62、TNF-α、IL-1β、IL-6、PI3K、Akt的mRNA表达
接种1×10^6个细胞于6孔板的小孔中,每组设3个重复,细胞长至80%左右,按照试验分组处理后,用预冷的PBS冲洗2次,然后在6孔板每孔中加入1mL Trizol试剂,冰上裂解20min,收集细胞,提取细胞总RNA。在NanoDrop 2000超微量紫外分光光度计上检测RNA的浓度。每个样品通过RNA反转录试剂盒反转录成cDNA。根据SYBR Green荧光定量PCR试剂盒说明加入体系。在罗氏荧光定量PCR仪运行预变性、变性、退火和延伸反应程序,共40个循环,得到目的基因和管家基因在各样品中的循环阈值(Ct),通过2-△△Ct计算目的基因在各处理组的相对表达量。
    c、ELISA试剂盒检测细胞上清液中IL-6、IL-1β、TNF-α含量
收集细胞培养上清,2000rpm离心15min,然后将50μL的细胞培养上清和50μL的抗体加入试剂盒所含的96孔板中,在室温条件下500rpm摇床中孵育60min,用300μL的WB洗涤液洗涤3次。随后,每孔加入100μLHRP结合物工作液,37°C孵育30min,用WB洗涤液洗涤3次。每孔加入100μLTMB显色液,立即向每孔加入50μL终止液,。在450nm波长处测量吸光度,并用Logistic曲线拟合。
    d、免疫荧光染色检测细胞模型中LC3表达和P62表达和自噬体的形成表达
将细细胞爬片用4%多聚甲醛固定15分钟后,用0.3%Triton X-100处理细胞切片5分钟,用5%BSA处理1小时。将脑切片和细胞切片在4°C下与以下一抗一起孵育过夜:小鼠抗GFAP、兔抗 LC3和山羊抗P62。二抗如下:FITC 抗小鼠IgG 、Cy3 抗兔 IgG 、AF648抗山羊IgG 。用 SP8 显微镜收集免疫荧光图片,并使用 ImageJ 软件分析免疫荧光密度。

5.3.4 统计学处理
    实验数据利用Graphpad Prism 5软件进行统计分析,结果用均值±标准差表示统计学分析。所有数据均至少完成3次独立实验。组间差异采用单因素方差分析(NAOVA)和Tukey进行检测。p<0.05时认为具有统计学意义。

5.4 拟解决的问题
    以C57BL小鼠构建大脑中动脉闭塞/再灌注(MCAO/R)模型,根据神经功能学评分和TTC染色确定最佳再灌注时间和最适激动剂浓度;以HMC3细胞建立氧糖剥夺/再灌注(OGD/R)模型,造模完成确定通过CCK8实验确定最佳处理时间和最适激动剂浓度。利用细胞生物学、分子生物学以及行为学等研究方法探究CB1R是否通过调控PI3K-Akt信号通路缓解CIRI诱导的神经炎症和自噬,并探究其潜在机制,进一步为CB1R在脑缺血再灌注损伤中保护作用机制的研究提供新的思路和方向。

5.5 预期成果

5.5.1 理论成果:以C57BL小鼠构建MCAO模型,培养HMC3细胞制备氧糖剥夺/再灌注(OGD/R)模型。利用实时荧光定量PCR(qRT-PCR)、蛋白质印迹(Western Blot)实验、ELISA法和免疫荧光等试验方法,根据实验结果验证CB1R通过激活PI3K-Akt信号通路抑制神经炎症和细胞自噬减轻脑缺血再灌注损伤的作用机制研究。
5.5.2 国内外期刊发表论文1~2篇
2025.01-2025.06:建立小鼠MCAO/再灌注、OGD/R模型,并在再灌注、复糖复氧不同时间点通过神经功能学评分和TTC染色计算梗死面积确定动物模型再灌注的时间;通过CCK8实验确定细胞模型复糖复氧时间,Western Blot、qRT-PCR验证CB1R对PI3K-Akt信号通路的激活作用。
2025.07-2025.10:利用ELISA、Hoechst、Western Blot实验染色实验,探究CB1R是否通过调控CB1R是否缓解由CIRI引起的神经炎症和自噬。
2025.10-2026.03:利用qRT-PCR实验、Western Blot、免疫荧光染色,探究CB1R是否通过调控PI3K-AKT通路减轻由CIRI神经炎症和自噬,整理分析实验数据。
2026.03-2026.10:撰写并发表实验论文。
7.1 与本项目有关的研究积累和已取得的成绩

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图1:小鼠MCAO/R模型与TTC染色

   在经过MCAO造模后,C57BL小鼠展现出明显的神经功能缺陷(包括半侧肢体瘫痪、追尾、对外界刺激反应过慢等),同时TTC染色显示,经过MCAO造模后,C57BL小鼠大脑出现明显梗死灶。

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图2:动物模型TTC染色及神经功能学评分

   根据在进过大脑中动脉闭塞1h后根据不同再灌注时间对C57BL小鼠进行分组,与sham组相比,在经过大脑中动脉闭塞/再灌注后,每组小鼠在行为学上均展现出不同程度的神经功能障碍,大脑均出现不同程度的梗死灶,其中再灌注12h处理组尤为明显。

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图3:MCAO/R模型小鼠Western Blot

   取小鼠大脑皮层组织样提取蛋白进行Western Blot实验,结果表明PI3K-AKT信号通路磷酸化水平在sham组与MCAO组表现出明显差异且与CB1R表达量呈现出明显相关性,为CB1R调控PI3K-Akt通路提供证据。

已具备条件:
   该课题指导老师认真勤奋,具有多年的研究基础,在动物学实验、神经生物学实验、细胞生物学实验以及分子细胞生物学研究中积累了丰富的工作经验。近年来在从事脑缺血再灌注损伤的研究以及CB1R相关作用机制的研究,所主持贺林院士新医学临床转化工作站科研基金项目《CB1R在脑缺血再灌注损伤中的保护作用机制研究》与本项目有较高相关性,为本项目的顺利进行奠定了扎实的理论与技术基础。
     
   本课题负责人自2024年4月参与济宁医学院教师科研扶持基金《TNF- a-TNFR信号在脑缺血再灌注损伤中的作用机制研究》,参与此项目细胞培养与Western Blot等实验,目前已经熟练掌握多种实验技术,并对大麻素受体与脑缺血再灌注损伤的机制有了一定程度的了解,为本课题的实验材料准备、实验开展与数据分析及整理等打下坚实基础。
       
   本课题将在济宁医学院神经生物学实验室完成,该实验室为“山东省高校神经生物学重点实验室”、“山东省十二五重点实验室”、“山东省十三五重点实验室”和“山东省泰山学者海外特聘专家实验室”。实验室设有大型仪器设备室、分子生物学室、细胞生物学室、细胞培养室、SPF动物房、生理技能学室和独立的动物饲养场所等。拥有real-time PCR仪、荧光显微镜、蛋白电泳及转印系统等仪器,完全具备实验所需条件。

经费预算

开支科目 预算经费(元) 主要用途 阶段下达经费计划(元)
前半阶段 后半阶段
预算经费总额 20000.00 13000.00 7000.00
1. 业务费 5000.00 3000.00 2000.00
(1)计算、分析、测试费 1500.00 PI3K、AKT、CB1R、IL-β、IL-6、TNF-α等引物设计合成 1000.00 500.00
(2)能源动力费 0.00 0.00 0.00
(3)会议、差旅费 0.00 0.00 0.00
(4)文献检索费 0.00 0.00 0.00
(5)论文出版费 3500.00 论文出版 2000.00 1500.00
2. 仪器设备购置费 0.00 0.00 0.00
3. 实验装置试制费 0.00 0.00 0.00
4. 材料费 15000.00 实验所需试剂、耗材及试剂盒等 10000.00 5000.00
结束