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APJ-GHSR1a二聚体的抗抑郁机制研究

申报人:赵益民 申报日期:2025-03-25

基本情况

2025创新项目
APJ-GHSR1a二聚体的抗抑郁机制研究 学生申报
创新训练项目
医学
基础医学类
学生来源于教师科研项目选题
二年期
抑郁症是常见的精神疾病,严重影响人的身心健康,但发病机制不清。G蛋白偶联受体GHSR1a和APJ广泛分布于中枢神经系统,与抑郁症发生密切相关。前期研究表明,GHSR1a和APJ可在体外培养的细胞中发生相互作用形成异源二聚体,并能作为复合物发挥抗抑郁作用。本项目将进一步运用邻位连接分析技术(PLA)和CO-IP研究两受体在动物体内的互作情况,通过构建两受体跨膜肽(TM),研究二者相互作用的关键跨膜区。创制CUMS抑郁大鼠,PLA检测GHSR1a-APJ二聚体在大鼠海马中的表达水平的变化,以及该二聚体对大鼠抑郁样行为的影响。通过western blot、免疫荧光染色检测PI3K、Akt、p-CREB、BDNF等信号分子的表达,以及DCX、NeuN阳性细胞的数量,进一步阐明二聚体对大鼠海马神经再生的影响。运用高尔基染色、透射电镜观察大鼠海马树突棘密度和突触后密度的差异,初步阐明GHSR1a-APJ二聚体对神经突触可塑性的影响,揭示二聚体的抗抑郁分子机制,为抑郁症的治疗和抗抑郁药物的研发提供新的实验依据和参考。
本人自2023年10月以来,于济宁医学院神经生物研究所学习基本实验技能,参与山东省自然科学基金《BK/B2R系统通过促进APP的非淀粉样蛋白水解抑制阿尔茨海默病Aβ生成的机制研究》,以及省卫健委等多项科研课题的研究。已熟练掌握细胞转染、CUMS抑郁模型制备、免疫荧光、Western Blot等多种实验技术。
1.山东省自然科学基金面上项目,BK/B2R系统通过促进 APP的非淀粉样蛋白水解抑制阿尔茨海默病 Aβ生成的机制研究,18万元,在研,主持;
2.国家自然科学基金面上项目,Apelin/APJ系统通过调控肌醇需求酶1α依赖的自噬抑制脑缺血再灌注损伤的机制研究,56万元,在研,参加。另外,还主持厅局级项目多项、校级课题多项,合计经费约100万元。
指导教师长期从事 GPCR和神经精神疾病的研究,在研项目与本项目关系密切,并开展了一些前期研究,得到了一些预期结果,确保了本项目的可行性。指导教师在研项目经费充足,可为本项目的顺利完成提供必要的经费支持。
校级

项目成员

序号 学生 所属学院 专业 年级 项目中的分工 成员类型
赵益民 临床医学院(附属医院) 临床医学(麻醉学方向) 2023 细胞转染、BRET
徐瑞晗 临床医学院(附属医院) 临床医学(麻醉学方向) 2023 CUMS抑郁造模,行为学检测
毛文伟 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科-临床医学院) 2022 PLA、CO-IP
史鹏宇 临床医学院(附属医院) 临床医学(麻醉学方向) 2023 高尔基染色、免疫荧光检测
余忠林 临床医学院(附属医院) 临床医学(麻醉学方向) 2023 ICV注射、Western Blot

指导教师

序号 教师姓名 所属学院 是否企业导师 教师类型
季丙元 精准医学研究院

立项依据

1)利用多种技术多层面阐明GHSR1a -APJ 能发生相互作用形成异源二聚体,以及研究其对细胞功能、大鼠抑郁样行为的影响。
2)阐明GHSR1a-APJ异源二聚体抗抑郁样行为的分子机制,为抗抑郁症药物的研发提供新的实验依据。
研究内容一:GHSR1a-APJ二聚体的体内外研究
1. 共聚焦显微镜检测GHSR1a和APJ的共定位
1)将成年雄鼠多聚甲醛心脏灌注取脑,进行冷冻切片,进行免疫荧光技术(Immunofluorescence, IF)操作,采用APJ抗体和GHSR抗体双染色,共聚焦检测,观察受体荧光定位受体。
2)将APJ-EGFP和GHSR-pcDNA3.1表达质粒在HEK293T细胞中瞬时转染后,制备细胞爬片,孵育特异性GHSR抗体后,加荧光二抗进行免疫荧光染色,封片后在激光共聚焦显微镜下观察两个受体在细胞中的表达分布位置情况。
2.APJ和GHSR1a受体互作研究
1)PLA检测GHSR1a-APJ二聚体的形成
采用邻位连接分析(proximity Ligation Assay,PLA)检测APJ和GHSR1a间的相互作用。将APJ-Myc和3HA-GHSR1a共转染HEK293T细胞,Myc和HA抗体双免疫染色,共聚焦检测二聚体;用APJ抗体、GHSR1a抗体对大鼠海马组织双免疫染色,分组如下:对照组、CUMS组、TM处理组。
2)CO-IP检测GHSR1a-APJ二聚体的形成
实验分组:对照组、CUMS组、apelin-13处理组、ghrelin处理组、apelin-13和ghrelin共处理组。按照试剂说明提取大鼠海马组织蛋白进行免疫共沉淀实验,检测APJ和GHSR1a间相互作用及各组间二聚体表达量的差异。
研究内容二:APJ-GHSR1a异源二聚体对下游信号通路影响
1)为了研究二聚体与G蛋白结合情况,对HEK293T细胞分三组做不同处理,情况如下:
①RLUC-Gi2, Gβ, Gγ, APJ-Venus转染HEK293T细胞,再分别用pcDNA3.1(Apelin13处理),GHSR(Apelin13处理), GHSR(ghrelin 处理),GHSR(apelin13和ghrelin共处理)。
② RLUC-Gq, Gβ, Gγ, APJ-Venus转染HEK293T细胞,再分别用pcDNA3.1(Apelin13处理),GHSR(Apelin13处理), GHSR(ghrelin 处理),GHSR(apelin13和ghrelin共处理)。
③ RLUC-Gs, Gβ, Gγ, APJ-Venus转染HEK293T细胞,再分别用pcDNA3.1(Apelin13处理),GHSR(Apelin13处理), GHSR(ghrelin 处理),GHSR(apelin13和ghrelin共处理)。
处理完成后采用BRET研究二聚体与G蛋白的结合情况。
2)磷酸化CREB表达水平的变化
海马原代神经元细胞分别用apelin-13、ghrelin单独或共同处理,WB检测0-120分钟内的p-CREB的表达水平,探究二聚体对于CREB-BDNF信号通路磷酸化水平的影响。海马原代神经元细胞用激动剂、拮抗剂或TM处理,WB检测p-CREB表达,分组如下:
① apelin-13
② ghrelin
③ apelin-13+ghrelin
④ apelin-13+ghrelin+YIL781
⑤ apelin-13+ghrelin+ML221
⑥ apelin-13+ghrelin+TM (阴性和阳性)
分析细胞内GHSR1a-APJ二聚体对下游信号分子CREB和BDNF表达水平的影响。
研究内容三:神经元可塑性检测
1)在细胞水平,PC12细胞预先进行血清饥饿处理,用两受体的激动剂单独或共同处理,每24h更换一次培养基,并加入新鲜的配体激动剂,4天后光学显微镜检测细胞的伸展状况。同时,大鼠原代海马神经元细胞体外培养7d后,激动剂或拮抗剂处理,高尔基染色。
分组如下:①Control;②apelin-13;③ghrelin④apelin-13+ghrelin;⑤apelin-13+ghrelin+YIL781;⑥apelin-13+ghrelin+ML221 ;⑦apelin-13+ghrelin+TM (阴性和阳性)
2)高尔基染色检测大鼠海马神经元树突棘密度。跨膜肽TM进行ICV注射,浓度为100ug/8ml,连续注射6天。运用快速高尔基染色试剂盒对脑片进行染色,使用全景数字切片扫描显微镜拍摄,并使用Fiji软件进行分析
分组如下:① Control;② CUMS+vehicle;③ CUMS+apelin-13;④ CUMS+ghrelin;⑤ CUMS+apelin-13+ghrelin;⑥ CUMS+apelin-13+ghrelin+TM (阴性);⑦ CUMS+apelin-13+ghrelin+TM (阳性)
研究内容四:APJ-GHSR1a二聚体对大鼠抑郁行为的影响
1) CUMS动物模型制备:
雄性SD大鼠(8~10周龄,体重200~250g)在标准实验环境(环境温度23℃-27℃,湿度50%±10 %,自由获得食物和水)饲养,光照周期12h。实验所用动物的管理遵循国家实验动物饲养管理和使用指南,以及济宁医学院实验动物管理条例。先在新环境适应一周,再用来开展实验。
模型制备前,将大鼠进行单笼饲养,并置于正常实验环境适应3天,正常提供食物和水,保证12h光照周期;模型制备过程中,大鼠按计划每天接受2种不同的应激性刺激,包括:束缚、拥挤过夜、倾斜过夜、束缚2h、食物剥夺、模拟潮湿环境过夜、不可预知性撞击、开灯过夜、4℃冰冻、足底电击。应激性刺激连续进行5周;分别在造模 2 、3 、4 周时通过 SPT、FST、TST等行为学实验,观察 SD 大鼠抑郁样行为的改变。应激结束后,出现糖水偏好率下降, FST、TST不动时间的延长,提示CUMS组大鼠出现快感缺失、绝望感及探索能力下降,判定选择抑郁敏感鼠,用于后续实验;对照组大鼠不接受应激,在正常实验环境中群居饲养。
造模成功后,正常大鼠和抑郁大鼠同时进入麻醉状态后断头并迅速取脑,冰上分离各前额皮质以及海马等脑组织。使用冰冻切片机切取脑组织切片。载玻片经4%多聚甲醛封闭过夜后,将脑组织切片平铺于载玻片上。采用PLA检测异源GHSR1a-APJ二聚体在正常大鼠和抑郁大鼠脑组织的表达差异。
2)APJ-GHSR1a二聚体对抑郁模型大鼠行为和下游信号通路表达的影响
CUMS大鼠通过手术植入连通侧脑室的套管,术后恢复一周。将CUMS抑郁症模型大鼠分成七组做不同处理,ICV注射激动剂或抑制剂,分组情况如下
① Control
② CUMS+vehicle
③ CUMS+apelin
④ CUMS+ghrelin
⑤ CUMS+apelin+ghrelin
⑥ CUMS+apelin+ghrelin+TM (阴性)
⑦ CUMS+apelin+ghrelin+TM (阳性)
注射两周,每天两次;于注射后的第7天和第 14天,以SPT、FST和TST为指标,检测大鼠行为绝望的作用效果。连续注射两周后取海马,提取蛋白,通过Western Blot检测大鼠海马PSD95、SYN、p-CREB、BDNF表达情况。每组选取实验大鼠进行多聚甲醛灌注取整脑,使用冰冻切片机切取脑组织切片,将脑组织切片平铺于载玻片上。IF检测大鼠海马DCX、NeuN表达。
1. 抑郁症概述
抑郁症是一种严重的情感性精神疾病,其发病机制复杂,涉及神经生物学、内分泌学、遗传学以及环境因素的多重交互作用。抑郁症的核心特征包括情绪低落、思维迟缓、意志减退,并伴随自杀倾向、高发病率和高复发率[1]。尽管近年来在抑郁症的研究领域取得了显著进展,但其病理机制仍未完全阐明。由于抑郁症[2]发病机制复杂,近年来有一些被广泛认同的假说。其中“抑郁症海马神经元再生障碍”[3]假说的提出是近年来抑郁症病因学研究最具突破性的进展之一,该假说认为抑郁症的发生与神经可塑性失调密切相关。研究发现,抑郁症患者的海马体积显著缩小,这与神经元萎缩、突触减少以及神经再生障碍密切相关。而慢性应激[4]可以抑制海马神经元的再生,导致神经可塑性降低,从而引发抑郁症状。
与此学说相似的是Duma S提出的“神经营养学说”,该学说认为,包括脑源性营养因子(BDNF)在内的神经营养因子可能直接影响着抑郁症的发生和抗抑郁药物效应的发挥。BDNF作为抑郁症研究中最受关注的神经营养因子[5]其在抑郁症患者血浆和海马中的水平显著降低,而抗抑郁治疗可以上调BDNF表达。BDNF通过激活TrkB受体[5],促进神经元存活和突触可塑性,从而改善抑郁症状。抗抑郁药物(如SSRIs)通过上调BDNF表达,促进突触再生和神经元可塑性,发挥治疗作用[6],并且慢性不可预见性应激也可以使幼鼠和成年鼠海马BDNF蛋白水平和mRNA水平下降。可见BDNF在抑郁症中发挥极其重要的作用。
2. Apelin/APJ系统
Apelin/APJ系统在情绪调节、应激反应以及抑郁症的发病机制中扮演重要角色[7]。Apelin是一种内源性肽类物质,其受体APJ[7]属于G蛋白偶联受体(GPCR)家族,主要通过与Gαi/o和Gαq/11蛋白偶联,激活下游信号通路,包括PI3K/Akt和ERK1/2通路,进而促进神经元存活和突触可塑性。Apelin在中枢神经系统中的表达主要集中在海马、下丘脑和皮层等与情绪和认知相关的脑区。下丘脑-垂体-肾上腺轴[8](HPA轴)是调节应激反应的重要神经内分泌系统。抑郁症患者的HPA轴功能异常,表现为皮质醇水平升高和负反馈调节失调。研究表明,慢性应激可以导致HPA轴过度激活,释放过量的皮质醇,而高水平的皮质醇对海马神经元具有毒性作用,抑制神经元再生并导致神经元萎缩。Apelin-13可以通过调节下丘脑-垂体-肾上腺轴(HPA轴)的功能,抑制皮质醇的过度释放,从而减轻慢性应激对海马神经元的毒性作用。此外,皮质醇还可以抑制BDNF的表达,进一步加剧神经可塑性的降低。此外,Apelin-13[9]还能通过激活PI3K/Akt和ERK1/2信号通路上调脑源性神经营养因子(BDNF)的表达,促进神经元再生和突触可塑性,改善抑郁样行为。动物实验进一步证实,Apelin-13能够显著减少慢性应激诱导的抑郁样行为,如强迫游泳测试和悬尾测试中的不动时间。
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图1. Apelin/APJ系统激活下游信号通路对抑郁症的作用(引自Li, A.,2023)
3. Ghrelin和GHSR1a系统
Ghrelin是由Kojima等在大鼠胃中首次发现,是一种28个氨基酸的肽,主要激活促生长激素释放受体(GHSR1a),其受体GHSR1a同样属于GPCR家族,在中枢神经系统中广泛表达[10]。Ghrelin在中枢神经系统中的表达集中在下丘脑、海马和边缘系统,这些区域与情绪调节和应激反应密切相关。GHSR1a 主要与 Gαq 偶联[11],激活PKC、IP3及 Ca2+等信号通路。CREB-BDNF信号通路与抑郁症密切相关,抑郁症病人的海马和前额叶皮质内,BDNF和cAMP应答元件结合蛋白(cAMP response element-binding protein,CREB) 的表达显著降低。抗抑郁药物(如三环地昔帕明、SSRI 依他普仑、NMDA 拮抗剂氯胺酮等)能阻止脂筏(lipid raft)对Gas的束缚,促进Gas与腺苷酸环化酶(AC)的偶联, 进而增强下游CREB的磷酸化,反过来,CREB又可诱导BDNF 的表达 [12],促进神经元的再生,达到抗抑郁效果。Ghrelin可增强CREB的表达,提高学习和神经可塑性。同时,进一步研究发现,Ghrelin能上调BDNF发挥抗抑郁效应,但是否通过CREB激活BDNF还不得而知。此外,Ghrelin[13]还能通过激活PI3K/Akt和ERK1/2信号通路上调BDNF表达,促进神经元再生和突触可塑性。研究表明,Ghrelin能够显著改善慢性应激诱导的抑郁样行为,其抗抑郁作用可能与CREB-BDNF信号通路的激活有关。
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图2. Ghrelin/GHSR1a系统调控的下游信号通路(引自Pan, X.,2024)
4. APJ-GHSR1a异源二聚体
Apelin/APJ系统和Ghrelin/GHSR1a系统在信号通路和生物学功能上存在诸多交叉,二者广泛分布与大脑组织如前额叶皮质、海马及边缘系统,而这些部位与应激、抑郁密切相关。Apelin/APJ系统和Ghrelin/GHSR1a系统可能通过形成异源二聚体,在信号转导和生物学功能上产生协同效应,这种协同交互作用可能在抑郁症的发病机制和治疗中发挥重要作用。且两者均能通过激活PI3K/Akt和ERK1/2信号通路促进神经元存活和突触可塑性,并通过CREB的磷酸化上调BDNF表达。此外,这两个系统可能通过形成异源二聚体,在信号转导和生物学功能上产生协同效应。例如,Apelin和Ghrelin [14]均能通过调节HPA轴的功能抑制皮质醇的过度释放,从而减轻慢性应激对神经元的损伤。同时,两者均能通过上调BDNF表达促进神经元再生和突触可塑性,改善抑郁样行为。这种交互作用可能在抑郁症的发病机制和治疗中发挥重要作用。基于上述讨论和前期研究结果,本项目拟进一步探讨APJ和GHSR1a的相互作用,并研究APJ-GHSR1a异源二聚体的信号转导途径,及其抗抑郁分子机制,为抑郁症的治疗和药物研发提供新的思路和实验依据。

1. Blazer, D.G., Depression in late life: review and commentary. J Gerontol A Biol Sci Med Sci, 2003. 58(3): p. 249-65.
2. Rakel, R.E., Depression. Prim Care, 1999. 26(2): p. 211-24.
3. Xiao, W., et al., The microbiota-gut-brain axis participates in chronic cerebral hypoperfusion by disrupting the metabolism of short-chain fatty acids. Microbiome, 2022. 10(1): p. 62.
4. Antoniuk, S., et al., Chronic unpredictable mild stress for modeling depression in rodents: Meta-analysis of model reliability. Neurosci Biobehav Rev, 2019. 99: p. 101-116.
5. Björkholm, C. and L.M. Monteggia, BDNF - a key transducer of antidepressant effects. Neuropharmacology, 2016. 102: p. 72-9.
6. Parkhurst, C.N., et al., Microglia promote learning-dependent synapse formation through brain-derived neurotrophic factor. Cell, 2013. 155(7): p. 1596-609.
7. Li, A., et al., Apelin/APJ system: an emerging therapeutic target for neurological diseases. Mol Biol Rep, 2023. 50(2): p. 1639-1653.
8. Joseph, D.N. and S. Whirledge, Stress and the HPA Axis: Balancing Homeostasis and Fertility. Int J Mol Sci, 2017. 18(10).
9. Zhang, Y., et al., Neuroprotective Roles of Apelin-13 in Neurological Diseases. Neurochem Res, 2023. 48(6): p. 1648-1662.
10. Pan, X., et al., Ghrelin/GHSR System in Depressive Disorder: Pathologic Roles and Therapeutic Implications. Curr Issues Mol Biol, 2024. 46(7): p. 7324-7338.
11. Rouault, A.A.J., et al., The GPCR accessory protein MRAP2 regulates both biased signaling and constitutive activity of the ghrelin receptor GHSR1a. Sci Signal, 2020. 13(613).
12. Yao, W., et al., Microglial ERK-NRBP1-CREB-BDNF signaling in sustained antidepressant actions of (R)-ketamine. Mol Psychiatry, 2022. 27(3): p. 1618-1629.
13. Yanagi, S., et al., The Homeostatic Force of Ghrelin. Cell Metab, 2018. 27(4): p. 786-804.
14. Namazi, G., et al., Association of the serum apelin, but not ghrelin, with the presence and severity of coronary artery disease. Indian Heart J, 2021. 73(2): p. 214-217. 
1. 创新点
近年来,研究表明GHSR1a和APJ在抗抑郁机制中扮演着关键角色,然而其复杂的病理机制至今尚未完全阐明。尽管已有文献指出APJ和GHSR1a与抑郁症之间存在关联,但多数研究仅聚焦于单一受体。本课题以 APJ和GHSR1a为研究对象,阐明二者在体内外形成异源复合体的分子机制及APJ-GHSR1a二聚体在CUMS大鼠中的抗抑郁机制,深入探索其在调节抑郁症中的作用机制,旨在为抑郁症的治疗提供新的理论支撑和实验数据。
2. 项目特色
日益增多的证据表明,抑郁症与特定脑区在调节情绪和认知功能方面的结构和功能变化密切相关。这些变化导致脑内神经细胞信号转导通路的异常,进而引起细胞功能障碍,影响神经细胞的凋亡和再生机制,最终诱发抑郁症状。其中,CREB-BDNF信号通路通过促进神经发生来发挥抗抑郁作用,一直是研究的热点。本课题的特色在于,GHSR1a-APJ二聚体能够诱导不同于单体的信号转导途径,我们将重点探究其对CREB-BDNF信号通路的独特调控机制,进一步丰富CREB-BDNF信号通路在抑郁症研究中的作用和意义。
1. 技术路线
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2.拟解决的问题
1)在细胞和个体水平研究GHSR1a-APJ二聚体发挥抗抑郁作用的具体分子机制。
2)正常大鼠和抑郁大鼠GHSR1a-APJ二聚体表达量是否有差异。
3. 预期成果
1)阐明GHSR1a-APJ二聚体对大鼠抑郁样行为的影响,初步揭示GHSR1a-APJ二聚体的抗抑郁分子机制。
2)拟发表核心期刊论文1-2篇。
2025.06-2025.11 质粒转染HEK293T细胞,共聚焦显微镜检测 APJ 和GHSR1a 的共定位,BRET、PLA、Co-IP研究APJ-GHSR1a二聚体的形成。
2025.12-2026.03 WB、BRET检测APJ-GHSR1a异源二聚体对下游信号通路的影响。
2026.04-2026.08 创制CUMS抑郁症大鼠动物模型,利用PLA技术检测正常大鼠和抑郁模型组脑组织中APJ-GHSR1a 异源二聚体表达量的差异。
2026.09-2027.2 行为学检测APJ-GHSR1a二聚体激动剂apelin-13和Ghrelin的抗抑郁效果,并检测二聚体对神经突触可塑性的影响。
1.与本项目有关的研究积累和已取得的成绩
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                                                                图1 BRET和CO-IP检测APJ和GHRS1a间的相互作用
(A)运用BRET检测APJ和GHSR1a的相互作用。转染24小时后,在每次实验之前测量每个样品的荧光和发光,以确认Rluc的表达相等,同时监测Venus表达的增加。分析BRET比值,四个独立实验的平均值±SEM与其他三组相比,P<0.001表示差异极显著。(B)BRET饱和曲线。用Rluc标记的质粒转染HEK293T细胞,并增加venus标记载体的量。BRET表示为mBU,是受体(Venus)荧光和供体(Rluc)荧光素酶活性1000比的函数。数据为平均值±SEM,n=3。(C)免疫共沉淀检测GHSR1a和Myc-APJ的互作。HEK293细胞瞬时转染HA-GHSR1a、Myc-APJ或共转染,或混合HA-GHSR1a和Myc APJ。用抗Myc或抗HA抗体对细胞裂解物进行免疫印迹。随后使用抗HA免疫沉淀细胞裂解物。免疫沉淀样品通过SDS/PAG进行分离,并用抗Myc抗体进行免疫印迹。
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                                                                    图2 APJ-GHRS1a二聚体对细胞增殖的影响
检测激动剂刺激后HEK293T细胞的细胞周期分布。(A,E)HEK293T-APJ细胞用apelin-13处理24小时或48小时后,细胞周期变化。(B,F)HEK293T- GHSR1a细胞用ghrelin处理24小时或48小时后,细胞周期变化。(C,G)HEK293- APJ/GHSR1a细胞用apelin-13处理24小时或48小时后,细胞周期变化。(D,H)HEK293T- APJ/GHSR1a细胞用ghrelin处理24小时或48小时后,细胞周期变化。(I)流式细胞分析显示APJ-GHSR1a二聚体增加了S期细胞的占比,促进了细胞的增殖。所有的结果代表了至少三次独立实验的平均值± SEM。***P< 0.001,表示差异极显著,$$P< 0.01表示差异非常显著。
                                                          summernote-img
图3 APJ-GHRS1a二聚体对CUMS大鼠抑郁行为的影响
(A)对大鼠进行慢性不可预见性温和刺激以使其产生抑郁行为。(B)CUMS过程中的大鼠体重变化。(C)刺激第一天和第28天时测试大鼠在悬尾实验中的不动时间。(D)悬尾示意图。(E)CUMS大鼠脑室预先注射GHSR1a拮抗剂YIL781 或 APJ拮抗剂 ML221,随后用apelin-13或ghrelin处理。最后一次药物处理后用TST实验测试大鼠的抑郁样行为。***P< 0.001表示与生理盐水组相比差异极显著, **P< 0.01表示与生理盐水组相比差异非常显著,#P<0.05表示与CUMS+Ghrelin组相比差异显著, $$P<0.01表示与CUMS+Apelin-13组相比差异非常显著。
                                                                summernote-img
、图4 APJ-GHRS1a二聚体对BDNF信号的影响
(A)CUMS大鼠预先用GHSR1a拮抗剂YIL781或APJ拮抗剂ML221处理(2 ug/天/只),随后用apelin-13或ghrelin刺激(2 ug/天/只)。Western blot检测BDNF蛋白表达,β-actin作为内对照。(B)对Western blot结果进行量化。**P<0.01表示CUMS+apelin组与CUMS+saline组相比差异非常显著,*P<0.05表示CUMS+ghrelin组与CUMS+saline组相比差异显著, #P<0.05表示CUMS+Apelin+YIL781与CUMS+Apelin组相比差异显著,$P<0.05 表示CUMS+Ghrelin+ML221组与 CUMS+Ghrelin组相比差异显著。

2.已具备的条件,尚缺少的条件及解决方法
(1)实验条件有保障
项目依托济宁医学院“泰山学者”实验室,本实验室为山东省神经生物学重点实验室,长期从事G蛋白偶联受体二聚化及抑郁症、脑中风、神经退行性疾病的研究。在硬件平台上,本实验室拥有SPF 动物房、双光子激光共聚焦超高分辨率显微镜(STED)、全内反射荧光显微镜(TIRF)、激光共聚焦显扫描微镜(CLSM)、流式细胞仪、荧光定量 PCR 仪(Roche 公司)、小动物活体成像仪、细胞间、免疫印迹系统等仪器平台并配备技术熟练的管理人员。有能进行动物行为学观察的高架十字迷宫、水迷宫等设备,完全能满足项目的实施。以上软硬件平台为该项目完成提供有力的保障。
(2)研究人员结构合理
研究人员为我校2023级临床医学本科生,学习成绩优异,有较强的基础知识储备和初步的科研能力,部分学生已参加项目的前期研究,具有一定的研究基础。指导教师长期从事神经精神疾病方面的研究,研究经历丰富,研究经费充足,能保证课题的顺利开展和完成。

经费预算

开支科目 预算经费(元) 主要用途 阶段下达经费计划(元)
前半阶段 后半阶段
预算经费总额 20000.00 12000.00 8000.00
1. 业务费 5000.00 2000.00 3000.00
(1)计算、分析、测试费 3000.00 基因序列测试和载体构建 2000.00 1000.00
(2)能源动力费 0.00 0.00 0.00
(3)会议、差旅费 0.00 0.00 0.00
(4)文献检索费 0.00 0.00 0.00
(5)论文出版费 2000.00 论文发表费用 0.00 2000.00
2. 仪器设备购置费 0.00 0.00 0.00
3. 实验装置试制费 0.00 0.00 0.00
4. 材料费 15000.00 购买实验动物、抗体、耗材、激动剂等 10000.00 5000.00
结束