济宁医学院 大学生创新创业训练计划管理系统

济宁医学院 创新创业管理系统

详情

多组学研究儿童耐药型支原体肺炎的潜在宿主反应

申报人：李禹昂 申报日期：2025-03-24

基本情况

2025创新项目
多组学研究儿童耐药型支原体肺炎的潜在宿主反应 学生申报
创新训练项目
医学
临床医学类
学生来源于教师科研项目选题
二年期
本研究旨在解析儿童耐药型支原体肺炎（MRMP）的宿主反应机制，采用代谢组学和蛋白质组学技术，系统比较耐药型（MRMP）、敏感型（MSMP）患儿及健康儿童的代谢物和蛋白质表达特征，筛选潜在生物标志物，并构建代谢-蛋白质相互作用网络，以揭示关键代谢通路及免疫调节、能量代谢、氧化应激等分子机制。研究内容包括样本收集与分组（每组≥20例）、UHPLC-MS代谢组学分析、LC-MS/MS蛋白质组学分析、多组学数据整合筛选关键生物标志物。研究结果有望为MRMP的早期诊断、精准治疗及预后评估提供科学依据，并发现新的治疗靶点。
1.2025年寒假期间在济宁医学院附属医院儿科综合病区见习，深入了解儿科常见病的诊疗流程，提升了临床思维能力。在指导医生的带领下，参与了查房、病例讨论及病历书写，接触了小儿肺炎、小儿肠炎、川崎病等多种疾病，掌握了儿童病史采集与体格检查的要点。并于本组成员完成耐药型支原体肺炎的讨论工作，查阅文献，共同完成一篇研究报告。
2.本人高中阶段曾完成过《当代中学生对于环境保护调查报告》，带领组员共同完成科研活动，并受到高中学校和市教育局的重点关注，并投稿一篇环境保护专题论文，获得省级三等奖。
（1）山东省卫生健康委员会, 厅局级, 2020M081, 泻肺开闭法联合无创呼吸机对重症肺炎患儿肺组织保护及提前撤机研究, 2021-01 至 2023-12, 3万元, 结题, 主持
（2）济宁医学院附属医院, 院级, 2020-BS-010, 基于STAT3-STAT6/EGFR-FOXA2信号通路的甘露消毒丹干预肺炎支原体肺炎的作用机制研究, 2020-01 至今, 20万元, 在研, 主持
（3）济宁医学院, 校级, JYFY2019FKJ106, 基于“脑肠轴”理论的养脾肥儿丸对脾失健运型厌食症患儿NPY、MOT干预的研究, 2020-01 至 2021-12, 3万元, 结题, 主持
（4）济宁医学院附属医院, 院级, JYFY363231, 花生四烯酸调控Menin-MLL复合物诱导MLL-r白血病的机制研究, 2023-09 至今, 25万元, 在研, 主持
济宁医学院附属医院, 院级, 2022-yxyc-002, 济医附院医学英才培养计划, 2022-01 至今, 20万元, 在研, 主持 
（1）项目选题与规划：指导教师凭借自身在儿科临床医学领域多年的研究与教学经验，协助学生对项目选题进行深入剖析。引导学生筛选出具有创新性与可行性的研究方向。在项目规划阶段，帮助学生梳理研究思路，制定详细且合理的研究方案，明确各阶段的研究目标、任务与时间节点，确保项目有条不紊地推进。
（2）项目成果指导：从数据的分析与呈现，到研究报告、学术论文的撰写，指导教师都将提供全方位的指导。帮助学生掌握学术论文的写作规范与技巧，提高学生的科研写作能力，确保项目成果能够以高质量的形式呈现。
校级

项目成员

序号 学生 所属学院 专业 年级 项目中的分工 成员类型
李禹昂 临床医学院（附属医院） 儿科学（本科） 2024 全面主持课题研究工作、协助进行临床试验
安科进 临床医学院（附属医院） 儿科学（本科） 2024 研究国内外发展现状和发展动态
孙诗睿 临床医学院（附属医院） 儿科学（本科） 2024 分析和整理临床试验数据
王愉然 临床医学院（附属医院） 儿科学（本科） 2024 查阅文献、展示汇报
赵传琦 临床医学院（附属医院） 儿科学（本科） 2024 创新点分析、撰写论文

指导教师

序号 教师姓名 所属学院 是否企业导师 教师类型
李娜 临床医学院（附属医院） 否
周凡静 医学影像与检验学院 否

立项依据

（1）研究目的
大环内酯类耐药型肺炎支原体肺炎（Macrolide-Resistant Mycoplasma pneumoniae Pneumonia, MRMP）是临床治疗中的难题，其发病机制复杂，宿主对耐药菌株的免疫和代谢反应尚未完全阐明[1-2]。本研究旨在通过整合代谢组学和蛋白质组学技术，全面解析儿童耐药型支原体肺炎的潜在宿主反应机制，为疾病的早期诊断、精准治疗和预后评估提供科学依据。具体研究目的包括：
1.揭示耐药型支原体肺炎的宿主代谢和蛋白质表达特征：通过代谢组学和蛋白质组学分析，系统比较耐药型支原体肺炎患儿与敏感型患儿及健康儿童的代谢物和蛋白质表达谱，揭示耐药菌株感染引起的宿主代谢重编程和免疫应答特征。
2.筛选潜在生物标志物：基于多组学数据，筛选出与耐药型支原体肺炎相关的差异代谢物和差异表达蛋白，构建可用于疾病早期诊断、分型和预后评估的生物标志物组合。
3.探索宿主反应的分子机制：通过整合代谢组学和蛋白质组学数据，构建代谢-蛋白质相互作用网络，解析关键代谢通路和蛋白质功能模块，阐明宿主对耐药菌株的免疫调节、能量代谢和氧化应激等反应机制。
4.为精准治疗提供新靶点：基于多组学分析结果，筛选出可能参与耐药型支原体肺炎发生发展的关键代谢物和蛋白质，为开发新的治疗靶点和干预策略提供理论依据。
（2）研究内容
2.1概述
本研究以代谢组学和蛋白质组学技术为核心，系统解析MRMP患儿的宿主反应机制，旨在揭示耐药菌感染引发的代谢及免疫变化，筛选潜在生物标志物，并为精准治疗提供新靶点。
研究将通过临床样本收集与多组学数据分析，比较MRMP与MSMP及健康儿童的代谢物和蛋白质表达差异。代谢组学采用超高效液相色谱-质谱联用（UHPLC-MS）技术，筛选关键代谢通路；蛋白质组学利用高分辨率质谱分析，鉴定差异表达蛋白及其功能模块。进一步整合多组学数据，构建代谢-蛋白质相互作用网络，探索宿主免疫调节、能量代谢及氧化应激的分子机制。
此外，研究将基于机器学习算法筛选并验证诊断及预后生物标志物，助力MRMP的早期识别和个性化治疗。通过解析耐药机制和宿主反应，本研究有望优化MRMP的临床诊疗策略，降低患儿住院时间和医疗费用，改善疾病预后，为精准医学提供科学依据。
2.2 MRMP的诊疗指南
2.2.1早期识别和临床诊断
在临床实践中如MP感染患儿对大环内酯类抗感染药物（macrolides, MLs）治疗72h无预期反应时，特别是在病情危重和/或有MLs用药史的情况下，应高度怀疑MRMP感染的可能[3]。MP培养结合药敏试验测定分离菌株的最低抑菌浓度（minimal inhibitory concentration, MIC）是MRMP诊断的金标准，MRMP的产生主要与其50S亚基23SrRNA基因突变有关，目前文献报道最多的变异位点为2063，其他变异位点还包括2064、2067和2617等。通过聚合酶链反应可在检测MP核酸基础上同时检测23S rRNA结构域的基因突变来确定MRMP感染的诊断[1-4]。
2.2.2 MRMP的应对策略
目前临床上主要采取MLs用药方案的优化、使用二线抗感染药物的因对策略[5]。根据有关文献研究，适当延长MLs的疗程可能有益于MRMP的控制。延长阿奇霉素疗程可能有利于提高组织药物浓度，以控制MRMP。此外，临床也使用四环素类（tetracyclines, TCs）二线抗感染药物。文献显示，与MLs类药物相比，TCs可明显缩短发热持续时间和住院时间，减轻MRMP症状。目前国内外指南仅建议≥8岁的患儿使用[5-7]。
2.3研究方法
2.3.1样本收集
拟收集分析2025年9月至2026年8月济宁医学院附属医院儿科住院治疗的患儿的临床资料。收集患儿的临床症状、实验室检查（如炎症指标、免疫指标）、影像学检查结果及治疗转归等信息。纳入标准：1）符合MPP诊断标准（参考《儿童肺炎支原体肺炎诊疗指南（2023年版）》[1]）；2）年龄1～14岁。排除标准：1）合并基础疾病者，如先天性免疫缺陷、慢性肺病、心血管疾病、肝肾疾病及结缔组织疾病等；2）同期存在明确其他病原体感染者；3）接受全身性激素或免疫抑制剂治疗时间较长者；4）病历资料不完整者。本研究患儿家长均知情并签署知情同意书[8-9]。
2.3.2分组依据
咽拭子聚合酶链式反应检测结果显示肺炎支原体 DNA 阳性， 且 23S 核糖体 RNA 位点 2063（A>G）和 2064（A>G）突变呈阳性，表明对大环内酯类抗菌药物产生耐药性。参考《儿童肺炎支原体肺炎诊疗指南（2023年版）》MPP诊断标准、MRMP诊断建议，入选患儿根据药敏试验结果分为耐药组（MRMP）和敏感组（MSMP），并设立健康儿童对照组，每组20例[10]。
2.3.3代谢组学分析
本研究通过采集耐药组（MRMP）和敏感组（MSMP）两组患儿的血清标本。使用超高效液相色谱-质谱联用（UHPLC-MS）技术进行非靶向代谢组学分析[11]。
检测平台：正离子模式（ESI+）和负离子模式（ESI-）全覆盖。
数据分析：
数据预处理：使用XCMS、Progenesis QI等软件进行峰提取、对齐和归一化。
差异代谢物筛选：采用多元统计分析（如PCA、PLS-DA、OPLS-DA）筛选耐药组与敏感组及健康对照组之间的差异代谢物。
代谢通路分析：通过KEGG、HMDB等数据库进行通路富集分析，揭示显著改变的代谢通路（如能量代谢、氨基酸代谢、脂质代谢等）。
2.3.4蛋白质组学分析
采集耐药型（MRMP）和敏感组（MSMP）两组患儿的血清标本，采用FASP（Filter-Aided Sample Preparation）方法提取血浆蛋白质并进行酶解，通过使用液相色谱-串联质谱（LC-MS/MS）技术进行非标记定量蛋白质组学分析。
检测平台：高分辨率质谱仪（如Orbitrap Fusion Lumos）。
数据分析：
数据预处理：使用MaxQuant、Proteome Discoverer等软件进行蛋白质鉴定和定量。
差异表达蛋白筛选：采用t检验或ANOVA分析筛选耐药组与敏感组及健康对照组之间的差异表达蛋白。功能注释与通路分析：通过GO（Gene Ontology）和KEGG数据库进行功能注释和通路富集分析，揭示显著改变的生物学过程和信号通路（如免疫调节、炎症反应、细胞凋亡等）。
2.3.5多组学数据整合分析
数据整合：采用相关性分析、共表达网络分析等方法整合代谢组学和蛋白质组学数据。
联合分析：构建代谢物-蛋白质相互作用网络，揭示关键代谢物和蛋白质之间的调控关系。使用WGCNA（Weighted Gene Co-expression Network Analysis）等方法识别与耐药型支原体肺炎相关的共表达模块。
生物标志物筛选：结合机器学习算法（如随机森林、支持向量机等），筛选出对耐药型支原体肺炎具有诊断和预后价值的生物标志物组合。
2.3.6生物标志物验证
在独立队列中验证筛选出的生物标志物的诊断和预后价值[12]。
（3）国、内外研究现状和发展动态
3.1国内外现状与挑战
肺炎支原体肺炎（Mycoplasma pneumoniae pnenumonia, MPP）是我国5岁及以上儿童常见的社区获得性肺炎（CAP）。如何早期发现MRMP病例、合理救治、避免出现患儿重症甚至死亡和避免后遗症的发生是MPP临床诊治的核心和关键问题。近年来，MPP对大环内酯类抗生素的耐药率显著上升。北京、上海等地的研究显示，耐药率已超过90%，部分地区甚至接近100%[13]。全球范围内，西太平洋地区的MRMP感染比例最高，其中日本2008-2015年报告儿童MRMP的检出率高达50%-90%。美洲地区肺炎支原体的耐药情况相对较轻，耐药率约为8.4%。欧洲的肺炎支原体耐药率整体较低，约为5.1%[2]。
由于大环内酯类药物的广泛耐药性，部分患儿需要多次更换抗生素或延长治疗周期，增加了医疗负担和患儿的痛苦[14]。阿奇霉素等大环内酯类药物虽面临耐药问题，但仍是治疗普通肺炎支原体肺炎的首选，临床中对儿童使用四环素类和喹诺酮类药物的长期副作用研究缺乏，难以评估对儿童生长发育的影响[15]。全球缺乏统一的儿童MRMP诊断和治疗共识，导致不同国家和地区之间的诊疗策略存在差异，不利于全球范围内对儿童肺炎耐药支原体的防控。一些发展中国家由于医疗资源有限，难以开展大规模的肺炎支原体耐药监测和研究，无法及时掌握本地的耐药情况和流行趋势[16]。
3.2发展方向及应对策略
深入研究肺炎支原体的耐药机制，特别是23S rRNA基因突变以外的其他耐药相关基因，为开发新型治疗手段提供理论支持[17]。进一步完善和推广基于分子生物学的检测技术，如PCR和荧光探针技术 ，实现对儿童肺炎耐药支原体的快速、精准检测。通过对呼吸道标本中相关基因突变的检测，早期识别耐药菌株，为临床治疗提供有力依据。例如，中国疾病预防控制中心等机构可加大对新型检测技术的研发投入，与医疗机构合作开展多中心研究，提高检测技术的准确性和稳定性[18]。
针对基层医生对儿童肺炎耐药支原体感染诊疗能力不足的问题，开展系统的培训和继续教育项目 。通过线上线下相结合的方式，邀请专家进行授课，讲解最新的诊疗指南和共识，分享临床经验。同时，建立远程医疗咨询平台，方便基层医生在遇到疑难病例时及时获得专家的指导，提高基层医疗水平[19]。
加强全球范围内的合作，建立国际间的儿童肺炎耐药支原体监测网络 。各国共享监测数据和研究成果，共同分析耐药菌株的传播规律和变异趋势，制定统一的防控策略。例如，世界卫生组织（WHO）可牵头组织国际合作项目，促进各国在儿童肺炎耐药支原体研究和防控方面的交流与合作[20]。国外医药企业和科研机构加大对新型抗菌药物的研发投入，针对肺炎耐药支原体的特点，开发具有全新作用机制的药物 。例如，研发能够特异性作用于支原体靶点的药物，提高药物的疗效和安全性。同时，积极开展新药的临床试验，加快新药的上市进程，为临床治疗提供更多选择[21]。
参考文献
[1] 中华人民共和国国家卫生健康委员会.儿童肺炎支原体肺炎诊疗指南（2023年版）[J].国际流行病学传染病学杂志志,2023,50(02)79-85.DOI:10.3760/cma.j.cn331340-20230217-00023
[2] Kim K, Jung S, Kim M, et al. Global trends in the proportion of macrolide-resistant mycoplasma pneumoniae infections: a systematic review and meta-analysis[J].JAMANetwOpen2022, 5(7):e2220949.DOI:10.100l/jamanetworkopen. 2022.20949.
[3] Deng F, Cao H, Liang X, et al. Analysis of cytokine levels, cytologi-cal findings, and MP-DNA level in bronchoalveolar lavage fluid of children with Mycoplasma pneumoniae preumonia [J]. Immun In-flamm Dis, 2023, 11(5) : e849.DOI: 10.1002/iid3.849.
[4] Waites KB, Xiao L,Liu Y, et al.Mycoplasma pneumoniae from the respiratory tract and beyond [J]. Clin Microbiol Rev, 2017, 30 (3) :747-809.DOI: 10.1128/CMR.00114-16.
[5] 中华医学会儿科学分会呼吸学组,国家呼吸系统疾病临床医学研究中心,中华儿科杂志编辑委员会. 儿童肺炎支原体肺炎诊断与治疗循证指南（2023）[J]. 中华儿科杂志,2024,62(12)：1137-1144.DOI:10.3760/cma.j.cn112140-20240722-00503
[6] 程平,张园园,陈志敏. 肺炎支原体肺炎的抗感染与抗炎治疗研究进展[J].国际儿科学杂志,2024,51(12)：829-833.DOI:10.3760/cma.j.issn.1673-4408.2024.12.008
[7] 中华医学会儿科学分会呼吸学组,《中华实用儿科临床杂志》编辑委员会. 儿童肺炎支原体肺炎诊治专家共识(2015年版)[J]. 中华实用儿科临床杂志,2015,30(17)：1304-1308.  DOI:10.3760/cma.j.issn.2095-428X.2015.17.006
[8] 李文博,张帆,程云,等.23S rRNA基因检测在儿童肺炎支原体肺炎大环内酯类耐药中的应用关联研究[J].儿科药学杂志,2025,31(02):32-36.DOI:10.13407/j.cnki.jpp.1672-108X.2025.02. 007.
[9] 施明杰,叶洪舟,袁琛.大环内酯类耐药肺炎支原体肺炎患儿发展为重症肺炎支原体肺炎的危险因素分析及预测模型构建[J].中国现代医生,2024,62(33):70-73.
[10] 伍珊珊,赵展,张小利,等.某院大环内酯类耐药的肺炎支原体肺炎患儿的临床特征分析[J].抗感染药学,2024,21(09):914-918.DOI:10.13493/j.issn.1672-7878. 2024.09-008.
[11] 尚嘉婷,白佳利,王慧,等.代谢组学在肺炎支原体肺炎中的生物标志物研究进展[J].齐齐哈尔医学院学报,2024,45(10):964-967.
[12] 王璐,李丹梅,司利钢.血清生物标志物在肺炎支原体肺炎患儿病情发展及预后评估中的应用价值[J].中国医刊,2025,60(02):172-176.
[13]王晓燕, 李华. 中国儿童肺炎支原体耐药性研究进展[J]. 中华儿科杂志, 2022, 60(3): 245-250.
[14]张伟, 刘芳. 大环内酯类抗生素在儿童肺炎支原体感染中的应用[J]. 中国实用儿科杂志, 2021, 36(5): 321-325.
[15]Zhu, Z. R., Zhao, Y., & Shen, X. L. (2019). Macrolide-resistant Mycoplasma pneumoniae pneumonia in children: Epidemiology, diagnosis, and management. Chinese Medical Journal, 132(19), 2377 - 2383.
[16]Waites, K. B., & Talkington, D. F. (2004). Mycoplasma pneumoniae and its role as a human pathogen. Clinical microbiology reviews, 17(4), 697-728.
[17]李娜, 赵强. 肺炎支原体耐药机制研究进展[J]. 微生物学通报, 2019, 46(8): 1789-1795.
[18]Wang S Y ,Zhou L Y ,Bai N G , et al.Expert consensus on the diagnosis and treatment of macrolide-resistant Mycoplasma pneumoniae pneumonia in children[J].World Journal of Pediatrics,2024,(prepublish):1-14.
[19]Nutting, P. A., et al. (2010). The educational redesign project: long - term outcomes of a national effort to improve primary care training. Annals of family medicine, 8(5), 405 - 414.
[20]Lee, K. (2003). Global governance and communicable disease control. Journal of Epidemiology & Community Health, 57(11), 847 - 852.
[21]Zhao, C., et al. (2022). Advances in understanding the mechanisms of Mycoplasma pneumoniae resistance to macrolide antibiotics. Chinese Medical Journal, 135(13), 1584 - 1590.
（4）创新点与项目特色
多组学研究为MRMP诊疗带来新思路。它融合多种组学技术，解析感染时宿主分子变化，定位耐药基因、分析代谢产物。研究聚焦感染后症状复杂的儿童群体，探寻安全疗法。科研团队融合临床与基础研究，利用多组学成果开发新策略，动态监测患儿感染过程，助力个性化治疗 。
（5）技术路线、拟解决的问题及预期成果
5.1技术路线
summernote-img
5.2拟解决的问题
1. MRMP早期诊断难，缺乏精准标志物
现有诊断依赖病原学检测和药敏试验，但存在时间延迟、费用高等问题，缺乏特异性生物标志物。本研究结合代谢组学和蛋白质组学，筛选相关分子，助力早期精准诊断。
2. MRMP耐药机制复杂，宿主免疫及代谢影响不明
耐药性主要由23S rRNA突变引起，但其对宿主的免疫和代谢影响尚未阐明。本研究通过多组学分析，探索免疫调节与代谢机制，为耐药肺炎支原体的病理研究和精准治疗提供新思路。
3. MRMP治疗选择有限，精准干预策略缺乏
现有治疗受药物耐受性和个体差异限制，抗生素滥用风险高。本研究通过多组学数据整合，筛选关键代谢通路和治疗靶点，助力个体化精准治疗，提升临床疗效。
5.3预期成果
本项目旨在研究儿童耐药型支原体肺炎的潜在宿主反应，为临床上诊疗MRMP提供创新性的诊疗思路和干预策略。本项目如能获得资助并顺利完成，预计在国内外学术期刊上发表高质量论文1-2篇。
（6）项目研究进度安排
2025.09—2025.12 积极搜集并阅读本研究相关文献，夯实项目背景和理论基础，制定项目具体实施方案；
2026.01—2026.12 收集临床信息，获得实验数据，对数据进行整合分析；
2027.01—2027.08 整理数据，撰写并发表论文。
我们前期已获得部分SMPP患者数据，分为MRMP和MSMP组，并设立健康对照，分别送检蛋白质组学和代谢组学分析。为了探讨组间差异物的诊断价值，我们首先比较了MRMP组与HC（健康对照）和MSMP组之间差异。建立各对照组PLS-DA模型，模型评价评分图，见图1。
summernote-img
图1 代谢组和蛋白组的差异物鉴定
代谢组学分析：与HC和MSMPs相比，MRMP组分别有611例和93例dem （FC > 1.5或FC < 0.67, p < 0.05），其中44个重叠。为了评估它们的诊断价值，我们首先计算了这44个重叠的dem（差异物）的AUC，其中选择4个AUC≥0.88的dem作为潜在的生物标志物候选物。四种dem在最佳截止点处计算的ROC曲线的AUC如图所示。其中1,10- epoxygermacrone与HC和MRMP相比AUC最大，分别为1和0.947。四种dem在三组中均有显著差异。见图2。
summernote-img
图2 鉴定MRMP潜在代谢标志物
蛋白组学分析：经过数据预处理和蛋白鉴定，共鉴定出241个dep。与hc和MSMPs相比，MRMP组分别有37例和208例dem （FC > 1.5或FC < 0.67, p < 0.05）。其中4个重叠。为了评估其诊断价值，我们计算了这4个重叠的dem的AUC， 4个dem的AUC均≥0.8。四种dem在最佳截止点计算的ROC曲线的AUC如图3所示。
summernote-img
图3 鉴定MRMP潜在蛋白标志物
（1）依托单位病源充足，医疗水平先进
本课题依托医院为济宁医学院附属医院，为省级三级甲等医院，为省儿科区域医疗中心，病源充足，具备良好的科研基础和实力。儿科开放床位479张，共9个病区，16个临床专业。现有医生108名其中主任、副主任医师31人，主治医师51人，博士、硕士研究生75人，年出院病人近2万人次。
（2）项目组人员梯队科学合理
项目组长期从事儿童疾病的研究，积累了丰富的研究经验，为课题运行提供了切实可行的有力保障。主要研究人员具有优势互补，技术实力扎实的特点，可为本课题的研究提供各方面的帮助。
（3）相关设备齐全
项目的开展将依托济宁医学院附属医院中心实验室，具备试验所需的所有仪器设备。实验室配备英国MOOR、激光共聚焦显微镜（LSM-510）、万能生物显微镜（POLYVAR）、全自动酶免分析仪（BRIO）、原位PCR仪（MGG）、酶标仪（Bio-tek）、培养箱（DHP-9052）、台式离心机（TD-60B）、洗板机、立式干燥箱（DHG-9075A）、多道微量移液器等。设备条件齐备，不需要购置任何大型仪器设备，为项目的进行提供可行性保障。
（4）相关试验技术成熟
科研经验丰富，对临床上试验设计、开展及后期随访均可熟练掌握。

经费预算

开支科目 预算经费（元） 主要用途 阶段下达经费计划（元）
前半阶段 后半阶段
预算经费总额 50000.00 试验执行 25000.00 25000.00
1. 业务费 50000.00 无 25000.00 25000.00
（1）计算、分析、测试费 40000.00 样本分析 20000.00 20000.00
（2）能源动力费 0.00 无 0.00 0.00
（3）会议、差旅费 2000.00 学术交流 1000.00 1000.00
（4）文献检索费 2000.00 文献检索 1000.00 1000.00
（5）论文出版费 6000.00 论文版面费 3000.00 3000.00
2. 仪器设备购置费 0.00 无 0.00 0.00
3. 实验装置试制费 0.00 无 0.00 0.00
4. 材料费 0.00 无 0.00 0.00
结束

用户单位： 济宁医学院        

版权所有： 南京先极科技有限公司        

访问量：0001170043