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巨噬细胞中的PFKFB3促进结直肠癌细胞增殖和迁移

申报人:李姝 申报日期:2025-03-23

基本情况

2025创新项目
巨噬细胞中的PFKFB3促进结直肠癌细胞增殖和迁移 学生申报
创新训练项目
医学
基础医学类
学生来源于教师科研项目选题
二年期
结直肠癌(CRC)的肿瘤微环境(TME)中,巨噬细胞通过分泌促炎因子和代谢调控显著促进肿瘤进展。PFKFB3作为糖酵解关键限速酶,在癌细胞中高表达并驱动其增殖和迁移,但其在巨噬细胞中高表达能否通过调控TME进而影响CRC进展尚未明确。本项目聚焦巨噬细胞中PFKFB3对CRC恶性行为的影响,通过基因干预或小分子抑制剂靶向抑制巨噬细胞PFKFB3表达/活性,结合体外共培养体系和动物模型,探究其对CRC细胞增殖、迁移的调控作用。研究旨在揭示巨噬细胞代谢重编程在CRC进展中的新作用机制,为基于TME调控的联合治疗策略提供理论依据。
1.国家自然科学基金青年项目(项目号:31801169);
2.山东省面上项目(项目号:ZR2023MH329);
3.山东省青年创新团队发展计划(项目号:2023KJ263)。
       本项目属于指导教师在研课题一个方向上的进一步探索,具备理论和前期实验结果的支持,课题结构合理,内容完整,具有创新性,指导教师已具备相关实验材料和试剂,可供本项目使用。
省级

项目成员

序号 学生 所属学院 专业 年级 项目中的分工 成员类型
李姝 临床医学院(附属医院) 临床医学(圣地卓越医师班) 2024 实验统筹与安排
王琦 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科) 2023 MTS 及免疫印迹实验
李雨轩 临床医学院(附属医院) 临床医学(圣地卓越医师班) 2024 细胞培养及小鼠繁育
程艺 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科) 2023 细胞功能评价
杜睿航 临床医学院(附属医院) 临床医学(眼视光医学方向) 2022 小鼠模型构建

指导教师

序号 教师姓名 所属学院 是否企业导师 教师类型
闫思源 精准医学研究院
艾志营 精准医学研究院

立项依据

1、探究PFKFB3(6-phosphofructo-2-kinase/fructose-2,6-bisphosphatase isoform 3;6磷酸果糖2激酶/果糖-2,6-二磷酸酶亚型3)对巨噬细胞炎症表型及炎症因子分泌的影响;
2、阐明巨噬细胞中PFKFB3调控CRC(Colorectal Cancer,结直肠癌)增殖和迁移的作用;
3、验证抑制巨噬细胞PFKFB3活性用于CRC治疗的潜力。
1、抑制PFKFB3对巨噬细胞功能发挥的影响:
(1)在THP1(人单核细胞)和R264.7(小鼠单核巨噬细胞)细胞中,应用PFKFB3的抑制剂PFK-15(一种有效且具有选择性的PFKFB3抑制剂,应用不同浓度的PFK-15处理筛选最佳浓度范围)处理后,Real-time PCR检测炎症因子表达情况,细胞因子芯片检测炎症因子释放情况;脂多糖(LPS,Lipopolysaccharide)诱发炎症后,检测抑制PFKFB3对相关炎症信号通路的调控(如NF-κB、 p38MAPK、ERK等的磷酸化改变;I-CAM1、V-CAM1等)。
(2)利用PFKFB3flox/flox转基因鼠和F4/80Cre+工具鼠杂交构建PFKFB3flox/floxF4/80Cre+(巨噬细胞特异性敲除)和PFKFB3flox/floxF4/80Cre-(野生型)小鼠,收集培养腹腔巨噬细胞和骨髓巨噬细胞,Real-time PCR检测炎症因子表达情况;细胞因子芯片检测炎症因子释放情况;LPS诱发炎症后,检测抑制PFKFB3对相关炎症信号通路的调控。
2、抑制巨噬细胞PFKFB3对CRC增殖和迁移的影响:
(1)从小鼠中收集培养的野生型和PFKFB3敲除的腹腔巨噬细胞和骨髓巨噬细胞,收集培养24小时后的上清备用。培养HT29细胞(CRC细胞),(A)检测不同来源的上清对细胞增殖的影响(MTS实验,克隆形成实验,EDU染色实验);(B)检测不同来源的上清对细胞迁移的影响(划痕实验,Trans-well实验);(C)提取上述处理后的蛋白,免疫印迹检测细胞增殖和迁移相关蛋白的表达情况。
(2)利用共培养小室,将野生型和PFKFB3敲除的腹腔巨噬细胞和骨髓巨噬细胞种植于小室内,HT29细胞种植于下层培养皿中,共培养24小时后,同上一步的实验检测是否得到类似结果。
3、体内实验验证敲除巨噬细胞内PFKFB3对移植瘤的抑制作用
培养小鼠CT26结肠腺癌细胞系,皮下注射至PFKFB3flox/floxF4/80Cre+和PFKFB3flox/floxF4/80Cre-小鼠构建皮下荷瘤模型。1~2周后安乐死小鼠并拍照称重,计算瘤体体积并绘制生长曲线。肿瘤组织分别经免疫印迹及免疫组化检测细胞增殖情况。
       结直肠癌(CRC)是消化内科常见恶性肿瘤之一,CRC在我国的发病率已高居全部恶性肿瘤的第二位,也是全球第三大恶性肿瘤,严重威胁病患的生命健康。根据数据显示,2020年全球结直肠癌新发病例数高达1919600例,死亡人数达到935200例。在世界各地,50岁以上年纪的人发病率和死亡率还在持续上升。男性发病率和死亡率均高于女性。世界各区域的发病率和死亡率存在差异,东亚是世界上结直肠癌发病率和死亡率最高的地区[1]。结直肠癌负担的改变反映了危险因素的变化,以及HDI水平和早期发现活动筛查的差异。中国患结直肠癌的人数较多,且发病率持续增加,这可能导致未来中国结直肠癌患病率负担持续加重,我国应扩大筛查以控制结直肠癌早发现早治疗,并将重点放在年轻人身上[2]。CRC的早期癌前病变通常表现出的症状为结直肠息肉或直肠腺瘤等,发展较为缓慢,并无明显症状,易漏诊和误诊,因此当患者确诊结直肠癌时多已到中晚期,错过最佳治疗时机,导致治疗效果较差。因此,早期诊断对于防治CRC、改善患者治疗效果、提高患者生活质量、延长生命时长至关重要。
       糖酵解是真核细胞内葡萄糖最初经历的酶促分解过程,是葡萄糖分解代谢的共同途径。肿瘤细胞为了适应肿瘤微环境和满足快速增殖的需求,肿瘤细胞具有“Warburg效应”,在氧气充足的情况下肿瘤细胞倾向于通过糖酵解途径来分解葡萄糖获得能量。研究表明,恶性肿瘤细胞主要利用有氧糖酵解为其快速生长和增殖提供能量及生长所需物质[3-4],且糖酵解与恶性肿瘤的发生、发展及转移密切相关,因此糖酵解这一生理过程是治疗恶性肿瘤的重要靶点。PFKFB3是糖酵解途径的关键调节蛋白,能够有效的调节糖酵解效率,敲低PFKFB3可使CRC细胞的有氧糖酵解和增殖活性受到明显抑制,抑癌基因(如p53)的缺失或原癌基因(如ras)的激活,均可激活PFKFB3基因,促进肿瘤的发生及进展[5]。敲除PFKFB3基因可降低PFKFB3的活性,可以抑制糖酵解速率及肿瘤生长速率[6]。从机制上来说PFKFB3介导的小管糖酵解重编程产生的乳酸显著增强了组蛋白乳酸化,特别是H4K12la,它富集于NF-κB信号基因如Ikbkb、Rela、Relb的启动子,激活他们的转录并且促进炎症反应的发生[7]。PFKFB3蛋白在前列腺癌、乳腺癌、肝癌、结直肠癌及胃癌等多种恶性肿瘤中高表达,与恶性程度及不良预后密切相关。以上表明,PFKFB3在调控糖酵解及肿瘤生长中起重要作用。
       肿瘤微环境是肿瘤细胞所生活的综合性生态系统,它包括肿瘤细胞所处的内外部环境,其核心构成免疫细胞群,它们共同编织着复杂的免疫网络,广泛的参与了各种免疫反应与调节功能活动。肿瘤免疫微环境主要由肿瘤细胞、多种免疫细胞、肿瘤相关成纤维细胞、细胞因子和趋化因子等组成,它们构成了一个复杂的肿瘤微环境(tumor microenvironment, TME)[8]。随着肿瘤的迅速生长,TME会呈现动态变化,为肿瘤增殖与侵袭的提供有利条件,有助于肿瘤免疫逃逸。巨噬细胞是肿瘤微环境中最突出的免疫细胞类型,它不仅参与介导肿瘤细胞的逃逸,帮助肿瘤细胞进入血液循环系统并播散到全身各处,还具备抑制机体抗肿瘤免疫反应的能力,是调节肿瘤微环境内动态平衡与肿瘤进程的关键因素[9]。TAMs(TAMs是肿瘤相关巨噬细胞Tumor-associated Macrophages)具有高度可塑性和异质性,TAMs是TME中的含量最多的免疫细胞。TAMs在表型上分为两种,分别是经典活化的M1型和交替活化的M2型。M1型TAMs分泌促炎细胞因子,其作用是帮助清除病原体和肿瘤细胞,产生抗肿瘤免疫反应。M2型TAMs在TME中含量较多,主要参与抗炎和组织修复,并在肿瘤的发生、发展和转移过程中发挥了重要的作用[10]。TAMs被募集到肿瘤区域,对各种TME成分(如细胞因子、趋化因子和外泌体)作出反应。然后这些环境因素诱导TAMs的一定极化状态,从抗肿瘤状态(M1样)到促肿瘤状态(M2样)。此外,TAMs的极化过程是连续的,并随着肿瘤的恶性进展逐渐向M2样状态倾斜形成有利于肿瘤生长和转移的正反馈回路[11]。TAMs在抑制免疫应答、促进肿瘤细胞增殖、驱动血管新生、重塑肿瘤基质,以及提升肿瘤细胞的侵袭与迁移能力等方面发挥着重要作用[12]。肿瘤微环境中多胺的水平受肿瘤细胞与免疫细胞竞争性的调节,使得多胺平衡朝向有利于自身细胞功能的方向倾斜。这一过程最终导致肿瘤微环境中的多胺耗尽,促进肿瘤细胞侵袭机体并导致免疫细胞的功能受到抑制 [13] 。
       结直肠癌转移(colorectal liver metastasis, CRLM)是结直肠癌患者治疗的重点和难点之一,也是CRC患者最主要的死亡原因。侵袭是一个复杂的、多步骤的过程,包括肿瘤细胞彼此分离,从原发肿瘤块位置移开,并侵入周围的基质[14-15]。在侵袭过程中,肿瘤细胞暴露于不断发生变化的肿瘤微环境细胞和分子成分中,表型转换是一个必要的过程。一些研究已经发现,在结直肠肿瘤细胞侵袭过程中会通过特定程序失去上皮表型,获得间质表型,这个过程称为上皮间充质转化(EMT:Epithelial-Mesenchymal Transition)[16]。在癌症生长和转移过程中,EMT的异常再激活与肿瘤细胞的恶性特征有关,包括促进迁移与侵袭,增加肿瘤干性,增强对化疗和免疫治疗的抵抗力。EMT受到一个复杂网络的严格调控,该网络是由多种内在因素和外在因素相互作用影响所精心策划形成的,包括多种转录因子、翻译后控制、表观遗传修饰和非编码RNA介导的调控[17]。EMT期间,上皮细胞失去其细胞极性和细胞间黏附,获得迁移和侵袭特性,以获得间充质干细胞表型。EMT过程中细胞标志物也在发生变化,其中上皮标志物如E⁃钙黏蛋白、角蛋白等表达缺失,而波形蛋白、N⁃钙黏蛋白、纤维连接蛋白等间质标志物表达增加,其中E⁃钙黏蛋白水平的下降可以导致细胞的黏附力降低,使细胞获得易于侵袭和转移的特性,是EMT最显著的特征。因此肿瘤细胞的EMT过程有利于邻近的肿瘤细胞分离,增强肿瘤细胞迁移、侵袭、抗凋亡和降解细胞外基质的能力,促使肿瘤细胞转移。结直肠癌发展过程中,肿瘤相关巨噬细胞的M2极化受到多种途径的调控,Runt相关转录因子1(RUNX1)能够通过促进CCL2的分泌和激活Hedgehog信号通路,招募巨噬细胞并诱导其向M2型极化,从而促进肿瘤血管生成和肿瘤细胞的恶性行为[18]。微生物促进肿瘤内乳酸的形成,通过对巨噬细胞RIG⁃Ilys852乳酸化修饰诱导其极化为M2,进而调控结直肠癌转移[19]。
       为了研究成年小鼠和特定细胞类型中的基因功能,已经创建了一种依赖于DNA重组酶Cre及其识别位点loxP的条件基因失活的改进策略。对于条件诱变,通过插入两个loxP位点来修饰靶基因,从而通过cre介导的重组酶来切除侧翼floxed基因片段。通过与Cre转基因系杂交获得基因突变小鼠,使小鼠体内的表达域内的靶基因失活。Cre/loxP系统有助于开发用于谱系追踪的细胞和组织特异性报告小鼠,以及小鼠细胞特异性条件耗竭模型[20]。构建基于F4/80 Cre和flox/flox小鼠的条件性基因敲除模型(Conditional Knockout, cKO),需通过Cre-loxP系统实现巨噬细胞特异性基因敲除。以下是详细的构建流程和关键注意事项:基本原理:Cre-loxP系统,Cre重组酶:由F4/80启动子驱动,在巨噬细胞中特异性表达,可识别并剪切两侧带有loxP位点的DNA序列。Floxed基因(flox/flox小鼠):目标基因(如PFKFB3等)的外显子被两个同向
的loxP位点包裹。当Cre存在时,loxP间的DNA被剪切重组,实现基因敲除。在本实验中,我们选择亲本F4/80cre+小鼠和PFKFB3flox/flox小鼠,通过两代杂交获得PFKFB3flox/floxF4/80cre+小鼠,然后以该基因型小鼠与PFKFB3flox/flox小鼠合笼繁育,后代即为实验用鼠。
参考文献:
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       聚焦巨噬细胞(而非癌细胞中)中PFKFB3的促癌功能,解析PFKFB3介导的“代谢—免疫”协同驱动模式。本项目的开展有助于理解肿瘤微环境中的巨噬细胞调控CRC进展中的作用,为开发新的肿瘤治疗策略提供理论基础。
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                                         技术路线图
拟解决的问题:
1. 抑制PFKFB3 诱导的巨噬细胞代谢重编程是否影响炎症因子的分泌?
2. 抑制巨噬细胞中的PFKFB3是否影响CRC的增殖和迁移?
预期成果:
1. 明确抑制PFKFB3对巨噬细胞功能发挥的影响;
2. 解析敲除巨噬细胞PFKFB3对CRC细胞增殖和迁移的调控;
3. 在SCI或I类核心期刊发表文章1篇。
本项目计划两年内完成,进度安排如下:
       2025.06-2026.05 繁育小鼠并进行基因型鉴定,直到获得PFKFB3flox/floxF4/80Cre+和PFKFB3flox/floxF4/80Cre-小鼠;在此基础上进行合笼繁育,获得实验用鼠;收集腹腔巨噬细胞和骨髓巨噬细胞,在有无LPS刺激的条件下,Real-time PCR检测炎症因子表达情况,检测相关炎症信号通路的改变。在THP1和R264.7细胞中,PFK-15处理后,Real-time PCR检测炎症因子表达情况,细胞因子芯片检测炎症因子释放情况;LPS处理后检测炎症信号通路的改变。收集培养巨噬细胞的上清,处理HT29细胞,检测对细胞增殖和迁移的影响。
       2026.06-2027.05 建立巨噬细胞和HT29细胞的共培养体系,检测对细胞增殖和迁移的影响;利用CT26细胞构建皮下荷瘤模型,在体内水平分析敲除PFKFB3对CRC细胞成瘤的作用。整理研究结果,撰写并发表论文,完成结题工作。
1.1 申请人及小组成员与本项目有关的研究积累
      李姝:2024级临床医学圣地班学生,通过理论学习,对基因的表达与调控,肿瘤的研究等都有一定的了解,自入学以来对肿瘤学产生了极大的兴趣。认真学习了学校安排的化学实验课程和组培实验,积累了一定的实验操作经验。经过大一上半学期的学习,已经对PCR、RNA提取、蛋白质提取、Western blot等生物学实验技术有所了解,有较强的自主学习能力和创新能力,为本课题的开展奠定了基础。
       李雨轩:2024级临床医学圣地班学生,自入学以来对肿瘤学产生了极大的兴趣,日常生活中会留意有关新闻,专刊。经过大一上半学期的学习,认真学习了学校安排的实验课程,还参加过有机化学开放实验室等活动,掌握了一些基础的实验操作,已经对PCR、RNA提取、蛋白质提取、Western blot等生物学实验技术有所了解,初步掌握相关文献资料的查阅方法,为本课题的开展奠定了基础。
       程艺:2023级临床医学06班学生,自2024年5月以来跟随精准医学研究院老师学习肿瘤生物学相关方面的知识。在系统学习过程中,熟练掌握了HE染色、免疫组化、PCR、Real-time PCR、MTS、RNA提取、蛋白提取、Western blot等生物学实验技术,前期积累的科研经验为本课题研究提供了扎实的技术支撑。
       杜睿航:2022级临床医学圣地班学生,自2022年10月起,开始在精准医学研究院接受系统的肿瘤生物学科研训练。通过跟随导师团队深入钻研该领域前沿理论,系统掌握了肿瘤生物学的研究范式,并基于实践需求重点培养了分子生物学实验技能。现已熟练操作PCR扩增体系、实时荧光定量PCR检测、核酸与蛋白质提取纯化、质粒构建与提取等核心技术,同时能够规范开展Western blot蛋白印迹分析、HE组织病理染色、免疫组化标记等实验流程。经过近半年的系统性训练,已具备独立完成肿瘤相关基因表达分析、蛋白功能验证及临床样本检测的能力,为后续开展肿瘤机制研究及转化应用课题奠定了扎实的实验技术基础。
       王琦:2023级临床医学13班学生,自2023年10月以来跟随精准医学研究院老师学习肿瘤生物学相关方面的知识。在此期间,对肿瘤生物学的研究方法有了一定的认识,并能熟练掌握PCR、Real-time PCR、RNA提取、蛋白提取、Western blot等生物学实验技术,为本课题的开展奠定了基础。
1.2申请人指导老师本项目有关的研究积累
       申请人的指导教师已围绕 PFKFB3 开展一系列的研究工作,前期结果表明:敲除 HT29细胞中的 PFKFB3 抑制了多种炎症因子的释放(图一);在单核细胞粘附实验中,PFK-15处理能抑制单核细胞与 HT29 细胞的粘附(图二);敲除 HT29 细胞中的 PFKFB3 后,LPS 上调炎症因子 ICAM1 表达的能力受到抑制,炎症相关信号通路 p65 的磷酸化也受显著降低(图三)。目前,转基因小鼠的繁育已获得所需要的基因型,下一步将进行合笼繁育,以获得对照组和敲除组鼠。
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                           图一、敲除 PFKFB3 抑制炎症因子释放。
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                           图二、PFK-15 抑制单核细胞粘附
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                            图三、敲除 PFKFB3 抑制 LPS 诱导炎症的效果
       济宁医学院拥有完善的实验设备及工作条件,人员配备齐整,对外交流较为广泛,具有透射电镜、激光共聚焦扫描显微镜等贵重仪器设备,可供预约使用。申请者所在的精准医学研究院拥有完成本项目所需的其它仪器设备和平台条件:(1)生物化学与分子生物学相关,如普通PCR仪、Real-time PCR仪、酶标仪、普通及低温离心机、Western Blot相关仪器和DNA凝胶分析系统等;(2)细胞生物学相关,如超净工作台、流式细胞仪、荧光显微镜、细胞培养箱及细胞工作站等;(3)动物实验相关,如SPF级动物房、体视显微镜、切片机、免疫组化染色系统和全自动组织芯片扫描仪等。研究院还有一大批优秀的教授、副教授以及专职科研人员等,能够在实验技术上给予指导帮助及在科研思路上集思广益。这些有益的实验条件为本研究的顺利进行提供了有力的保障。

经费预算

开支科目 预算经费(元) 主要用途 阶段下达经费计划(元)
前半阶段 后半阶段
预算经费总额 20000.00 购买试剂耗材及版面费 11000.00 9000.00
1. 业务费 5000.00 文章版面费 0.00 5000.00
(1)计算、分析、测试费 0.00 0.00 0.00
(2)能源动力费 0.00 0.00 0.00
(3)会议、差旅费 0.00 0.00 0.00
(4)文献检索费 0.00 0.00 0.00
(5)论文出版费 5000.00 文章版面费 0.00 5000.00
2. 仪器设备购置费 0.00 0.00 0.00
3. 实验装置试制费 0.00 0.00 0.00
4. 材料费 15000.00 实验耗材及抗体 11000.00 4000.00
结束