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隔药灸脐法通过调控巨噬细胞糖酵解-M1/M2极化轴恢复肠道免疫稳态改善IBS-D的作用机制研究

申报人:曹文英 申报日期:2025-03-21

基本情况

2025创新项目
隔药灸脐法通过调控巨噬细胞糖酵解-M1/M2极化轴恢复肠道免疫稳态改善IBS-D的作用机制研究 学生申报
创新训练项目
医学
中西医结合类
学生来源于教师科研项目选题
二年期
腹泻型肠易激综合征是以腹痛、腹泻反复发作为核心症状的胃肠功能障碍性疾病,其病理机制尚未完全阐明。申请人前期研究证实隔药灸脐法可有效改善 IBS-D 腹泻、腹痛症状,改善IBS-D大鼠结肠形态,抑制促炎因子 IL-6、IL-1β、TNF-α 的释放,但具体机制不明。近年研究发现,肠道巨噬细胞代谢重编程(如糖酵解激活)驱动的M1/M2极化失衡是导致肠屏障破坏和免疫紊乱的核心环节,而PI3K/AKT/HIF-1α信号通路在此过程中发挥关键调控作用。然而,如何通过干预巨噬细胞代谢极化打破上述恶性循环,仍是IBS-D治疗的难点和前沿领域。鉴于此,本课题以“肠道屏障-炎症反应”为切入点,拟采用组织形态学观察、Elisa、 Western blot、RT-qPCR等方法,构建“穴位刺激-巨噬细胞-糖酵解-信号通路-病理表型”的完整证据链,阐明隔药灸脐法通过抑制PI3K/AKT/HIF-1α信号通路介导的巨噬细胞糖酵解代谢重编程,调控M1/M2极化平衡,进而减轻肠道炎症反应,改善IBS-D病理进程。研究结果不仅将为隔药灸脐法治疗IBS-D提供实验证据,同时也为防治IBS-D 的发生和发展提供新的靶点。
校级大创两项;24年中国国际大学生创新大赛校级三等奖;两届“挑战杯”院级一等及三等奖各一项。已跟随指导老师完成本项目的预实验,熟练掌握腹泻型肠易激综合征大鼠的模型制备、行为学检测等实验技术。
主持厅局级课题 2 项;参与国家级课题 1 项,省部级课题 1 项, 厅局级课题 4 项,校级课题 2 项。
指导老师将从课题立项、实验开展、论文撰写等方面给予学生指导、帮助,全力支持,确保项目顺利结题。 
校级

项目成员

序号 学生 所属学院 专业 年级 项目中的分工 成员类型
曹文英 中西医结合学院 针灸推拿学(本科) 2022 动物实验
何瑞双 中西医结合学院 针灸推拿学(本科) 2023 动物实验
刘淑安 中西医结合学院 针灸推拿学(本科) 2023 动物实验
逯铠诚 中西医结合学院 针灸推拿学(本科) 2023 指标检测
宁创举 中西医结合学院 针灸推拿学(本科) 2023 数据分析
解伟佳 中西医结合学院 中西医临床医学(本科) 2023 指标检测

指导教师

序号 教师姓名 所属学院 是否企业导师 教师类型
颜晓 中西医结合学院

立项依据

1.验证隔药灸脐法可缓解IBS-D炎症反应及肠屏障损伤;
2.验证隔药灸脐法对IBS-D模型大鼠肠道巨噬细胞糖酵解代谢的关键调控作用;
3.阐明隔药灸脐法通过抑制糖酵解-M1/M2极化轴失衡恢复肠道免疫稳态的分子机制。
研究一 隔药灸脐法对 IBS-D 大鼠炎症反应、肠屏障损伤的影响
1.评价隔药灸脐法治疗 IBS-D 整体疗效
采用结肠注入乙酸与束缚应激法建立 IBS-D 大鼠模型,以生理盐水、匹维溴铵为对照,给予隔药灸脐法干预,观察大鼠的精神状态、皮毛色泽、饮食饮水量、体质量增长率等一般情况、粪便性状、粪便含水量等排便情况以及AWR评分。
2.评价隔药灸脐法改善 IBS-D 大鼠炎症反应的作用
酶联免疫吸附试验(ELISA)测定大鼠结肠组织、血清中促炎性细胞因子白细胞介素(IL)-1β、白细胞介素 (IL)-6 和肿瘤坏死因子(TNF)-a 的水平,明确隔药灸脐法对 IBS-D 大鼠炎症反应的改善作用。
3.评价隔药灸脐法改善 IBS-D 大鼠肠屏障损伤的作用
① HE 染色观察各组大鼠肠组织病理结构;
②免疫荧光双标法观察肠上皮细胞紧密连接蛋白 Occludin、ZO-1 蛋白的分布和表达情况,明确隔药灸脐法对 IBS-D 大鼠肠屏障损伤的改善作用。

研究二 隔药灸脐法在IBS-D模型大鼠结肠巨噬细胞糖酵解代谢的关键调控作用
1.评价隔药灸脐法对IBS-D模型大鼠结肠巨噬细胞极化的影响
①采用流式细胞术测定结肠组织中CD68+/F4/80+细胞的MHC-II+、iNOS+、CD163+、CD209+及Ki-67+表达水平;
②免疫荧光法检测结肠黏膜固有层巨噬细胞的M1/M2极化亚型。
2.评价隔药灸脐法对IBS-D模型大鼠结肠糖酵解关键激酶的影响
①Western blot检测各组大鼠结肠糖酵解关键激酶HK2、PKM2、PDK1、LDHA蛋白表达水平;
②RT-qPCR检测检测各组大鼠结肠糖酵解关键激酶HK2、PKM2、PDK1、LDHA mRNA表达水平。
研究三 基于PI3K/AKT/HIF-1α信号通路探讨隔药灸脐法通过抑制糖酵解-M1/M2极化轴失衡恢复肠道免疫稳态的分子机制
1.评价隔药灸脐法对PI3K/AKT/HIF-1α信号通路关键分子表达的影响
采用Western blot、RT-qPCR、ELISA技术检测大鼠结肠组织中PI3K、AKT、pAKT、pm TOR及HIF1α的表达情况。
2.评价PI3K/AKT/HIF-1α信号通路介导的结肠糖酵解-M1/M2极化轴在隔药灸脐法抑制结肠炎症,恢复结肠黏膜屏障中的关键作用,揭示其具体作用机制
通过设置正常组、模型组、隔药灸脐组、隔药灸脐+PI3K抑制剂组、匹维溴铵组,然后对大鼠进行结肠炎症反应、黏膜屏障、巨噬细胞极化、糖酵解、PI3K/AKT/HIF-1α信号通路关键分子表达情况等上述检测。
具体研究方法
1.实验动物及分组
健康SD大鼠,雄性,SPF级,实验动物饲养及观察在济宁医学院动物实验中心(SPF 级)进行,整个实验操作需要遵循中华人民共和国科技部颁布的《关于善待实验动物的指导性意见》,围绕目标1、目标2动物分为正常组、模型组、隔药灸组、匹维溴铵组,围绕目标3动物分为正常组、模型组、隔药灸脐组、隔药灸脐+PI3K抑制剂组、匹维溴铵组,并根据检测指标确定各组大鼠所需具体只数。
2.模型制备
适应性喂养 1 周后,给予乙酸灌肠+束缚应激建立 IBS-D 模型。 造模前 24h 大鼠禁食不禁水,在乙醚麻醉后经肛门插入连接注射器的硅胶管(距肛门约 7cm),结肠内灌入 40mL/L 的乙酸 1mL,缓慢拔出硅胶管,用手压迫肛门并将大鼠尾巴抬高 30s, 后用 0.01mmoL/L 磷酸盐缓冲液(PBS)1mL 冲洗结肠,放回笼中自由活动进食水,于第 7 天行束缚应激,每天用宽透明胶带束缚前肩、前上肢及胸部,限制其搔抓头面部[1],束缚时间 2h,连续束缚 7 天。各造模组大鼠粪便含水量[2]及腹壁撤退反射(abdominal withdrawal reflex, AWR)评分[3]高于正常组(有统计学意义)为造模成功的标准。
3.干预方法
将大鼠随机分为对照组、模型组、隔药灸脐组、隔药灸脐+PI3K抑制剂组和匹维溴铵组。连续干预 10 天。
①正常组:不做治疗,每天给予生理盐水灌胃,同时与隔药灸脐组同步的抓取固定。
②模型组:不做治疗,每天给予生理盐水灌胃,同时与隔药灸脐组同步的抓取固定。
③隔药灸脐组:
大鼠神阙穴定位:根据类比原理,在胸腹正中线上,剑突至耻骨联合上缘上 2/3 与下 1/3 交界处[4-5]。
方药组成及制备:选自首届岐黄学者、第二届全国名中医高树中教授临床经验方腹泻方(白术、茯苓、丁香、芍药、五倍子等,国家发明专利:ZL201110138851.9),将药物超微粉碎混合,密封备用。
隔药灸脐操作方法:将大鼠仰卧固定,用 75%酒精常规消毒神阙穴,以温开水调面粉成圆圈状(内径约 0.5cm),置于大鼠神阙穴上,再将备好的药末均匀地填至神阙穴,将小艾炷(直径 8 约 0.3cm,高约 0.3cm)置于药末上施灸。连灸 10 壮,约 30 分钟,注意防止烫伤。
每 3 天治疗 1 次,同时每天给予生理盐水灌胃。
④隔药灸脐+PI3K抑制剂组
先按照20mg/kg剂量予以LY294002腹腔注射,2 h后进行隔药灸干预,操作方法同电针组。
⑤匹维溴铵组:
将匹维溴铵用生理盐水稀释后制成浑浊悬浮液后灌胃,灌胃剂量根据《药理实验方法学》 按成人 70kg 体质量与 IBS-D 模型大鼠 200g 体质量 1:0.018 比例配制灌胃溶液。大鼠每天上午定时灌胃干预一次,给予连续灌胃 9 天,同时与隔药灸脐组同步的抓取固定。
4.观察指标与方法
①一般情况及腹泻症状检测
一般情况:精神状态、皮毛色泽;饮食量;体质量增长率;
腹泻症状:排便情况;粪便性状;粪便含水量。
②行为学检测(AWR 评分)
腹壁撤退反射(AWR),每只大鼠用温水给予球囊扩张 3 次,容量分别为 1.0mL、 1.5mL、 2.0 mL,每次扩张持续 20s,间隔 30s(以防肠道缺血)。每个容量重复3次,取 3 次评分的均值。
③血清、组织炎症因子水平检测
a .血清 IL-1β、IL-6 和 TNF-a 检测
取各组大鼠腹主动脉抽血标本,利用特异的炎症因子 ELISA 试剂盒,对结肠组织及血清中炎症因子 IL-1β、IL-6 和肿瘤坏死因子 TNF-a 进行检测,明确各组 IBS-D 模型大鼠血清炎症因子表达情况。
b .肠组织 IL-1β、IL-6 和 TNF-a 水平
Western blot 检测法,提取蛋白,BCA 蛋白浓度测定试剂盒定量,蛋白变性,制备体系,制备 SDS-PAGE 凝胶,样品变性及电泳,电泳结束后,将凝胶上分离到的蛋白条带通过转移电泳方式转印,然后标记、孵育、采用 PVDF 膜作为固相支持物及半干 转的转膜方式。对胶片进行扫描,生成灰度值,检测 IL-1β、IL-6 和 TNF-a 蛋 白表达情况。
④肠屏障损伤指标检测
a .大鼠肠组织病理结构
将无菌条件下取出大鼠末端结肠组织,制作成组织切片,在透射电镜下观察肠粘膜上皮细胞超微结构分别观察肠粘膜上皮细胞形态、大小、排列及连接 微结构,微绒毛形态、密度、长度、排列及整齐程度等。
b .肠上皮细胞紧密连接的状态
利用激光共聚焦技术和免疫荧光方法,观察 IBS-D 大鼠肠上皮细胞紧密连接蛋白 Occludin、ZO-1 的分布和表达情况,通过 RT-PCR 技术和 Western Blot 技术,对大鼠结肠组织内的紧密连接蛋白 Occludin、ZO-1 的 mRNA 和蛋白的表达情况进行检测。
⑤巨噬细胞极化相关指标检测
a .CD68+/F4/80+细胞的MHC-II+、iNOS+、CD163+、CD209+及Ki-67+表达水平
将结肠组织剪碎至1-2 mm³碎片,置于含胶原酶IV(1-2 mg/mL)和DNase I(20 U/mL)的RPMI 1640中。37℃振荡消化30-45分钟,每隔10分钟吹打一次。加入含10% FBS的培养基终止反应。依次通过100 μm和40 μm细胞筛,收集滤液。用ACK buffer处理5分钟,PBS洗涤2次。台盼蓝染色评估活率(>80%为宜)。用抗CD16/32抗体(1:100)室温孵育10分钟。加入抗CD68-FITC和F4/80-PE-Cy7,避光孵育30分钟(4℃)。加入Fixable Viability Dye(1:1000),室温避光孵育20分钟。用4%多聚甲醛室温固定20分钟。对于胞内标记(iNOS、Ki-67):使用预冷的90%甲醇,冰上透化30分钟。对于膜内标记(MHC-II、CD163、CD209):使用0.1% Triton X-100透化10分钟钟。PBS洗涤2次。加入MHC-II-APC、iNOS-PE、CD163-PerCP-Cy5.5、CD209-Alexa Fluor 700和Ki-67-BV421,避光孵育30分钟(4℃)。上机检测。
b .免疫荧光法观察结肠黏膜上皮组织中巨噬细胞极化表达
石蜡切片完成脱水与脱蜡后,首先 PBS 洗涤 3 次,滴加含 1% 牛血清白蛋(BSA) ,10% 山羊血清和 0. 3% Triton X - 100 的封闭缓冲液室温孵育 1 h; 之后去除封闭液,滴加一抗稀释液 CD68( 1:200) ,M1 巨噬细胞标记物 i NOS ( 1: 200 ) ,M2 巨噬细胞标记物CD206( 1: 150) 在 4 ℃ 箱孵育过夜; 取出洗涤后滴加带荧光的二抗稀释液,室温避光孵育 1 h; 洗涤 3 次,再滴加 DAPI 工作液,室温避光孵育 5 min; 洗涤干净后滴加防荧光淬灭封片剂进行封片;最后使用荧光显微镜进行拍照。以百分比柱状图形式展现巨噬细胞极化水平,M1 巨噬细胞荧光蛋白比例 = i NOS+/ CD68+,M2巨噬细胞荧光蛋白比例 = CD206+/ CD68+。
⑥糖酵解相关指标检测
a .Western blot检测各组大鼠结肠糖酵解关键激酶HK2、PKM2、PDK1、LDHA蛋白表达水平
蛋白质免疫印迹法检测结肠糖酵解关键激酶 HK2、PKM2、PDK1、LDHA 蛋白表达 适量结肠组织加入 600μl RIPA 溶液,研磨后 4℃ 下 12000r·min-1离心 5min,取上清液,BCA 试剂盒测蛋白浓度。加入缓冲液沸煮 15min,制备 15% 和 8% 凝胶电泳,转
膜,脱脂奶粉封闭; 加 PKM2( 1∶ 1000) 、HK2( 1∶ 800) 、PDK1( 1∶ 1000) 、LDHA ( 1 ∶ 1000) 、GAPDH ( 1 ∶ 2000) 一抗 4℃ 孵育过夜; TBST 洗涤,加入山羊抗兔二抗( 1∶ 5000) 常温孵育,加入 ECL发光液显影曝光,凝胶成像系统分析,测定条带与内参的光密度值,取两者比值定量分析。
b .RT-qPCR检测检测各组大鼠结肠糖酵解关键激酶HK2、PKM2、PDK1、LDHA mRNA表达水平
用Trizol试剂提取结肠组织总RNA。以mRNA为模版进行逆转录生成cDNA,-20℃保存备用。应用荧光定量试剂盒进行HK2、PKM2、PDK1、LDHA mRNA 检测,采用引物设计软件 Primr premier 与 Omiga 对HK2、PKM2、PDK1、LDHA 扩增引物进行设计。以GAPDH为参照,结果采用 2-ΔΔCT计算各组目的mRNA表达变化。
⑦PI3K/AKT/HIF-1α信号通路关键分子表达检测
a. 酶联免疫吸附法检测信号轴关键分子蛋白表达情况:采用ELISA试剂盒检测PI3K、AKT、p-AKT、p-m TOR及HIF1α的蛋白表达,具体操作按照试剂盒进行。
b. Western blot检测信号轴关键分子蛋白表达情况:采用Western blot检测大鼠结肠组织中PI3K、AKT、p-AKT、p-m TOR及HIF1α的蛋白表达,操作同上。
c. RT-qPCR检测信号轴关键分子mRNA表达情况:采用RT-qPCR检测大鼠结肠组织PI3K、AKT、p-AKT、p-m TOR及HIF1α的mRNA表达,操作同上。
⑧统计学分析
本研究所有数据采用 SPSS 22. 0 统计分析软件进行统计分析,实验数据以 ±s表示,在检验数据正态分布及方差齐性的条件下,多组间数据比较采用方差分析,各组组间差异的比较用 LSD-t 检验,数据相关分析采用 Spearman 相关 ,以 P<0.05为差异有统计学意义。
1.寻求安全有效防治腹泻型肠易激综合征(IBS-D)的方法并阐明其机制,具有重要的临床价值和社会意义
肠易激综合征(irritable bowel syndrome,IBS)是临床上多见的一种功能性胃肠道疾病,常见于年轻人[1]。近年来,随着社会发展及饮食方式的改变,胃肠疾病在人体发生得越来越频繁,IBS在我国发病率约为1.4%~11.5%[2]。在我国尤以腹泻型肠易激综合征(IBS-D)最为多见[3, 4],约占IBS发病率的40%~65%[3],其肠道运动及排便习惯的改变,对患者造成身心危害的同时,还造成大量的医疗花费,我国每年IBS的医疗花费超过100亿美元[5]。部分IBS患者的生活质量甚至要低于糖尿病患者和胃食管反流病患者[6]。IBS-D发病机制复杂多维且尚未完全明确[7-10],现代医学也无治愈该病的确切疗法,不能缓解IBS-D患者的整体症状[11]。因此,寻找一种效果显著且能被大多数人接受的治疗IBS-D的方法迫在眉睫。
《针灸资生经》中曾记载有:“若灸溏泄,脐中第一”。隔药灸脐法是一种极具特色的中医外治疗法,以脐(神阙穴)处为用药部位,联合艾灸的温通作用,促进药物的吸收,以激发经气、疏通经络、促进气血运行、调节人体阴阳与脏腑功能,达到治疗疾病的目的。团队前期临床试验研究已证实隔药灸脐法可有效减少IBS-D排便次数,降低肠道高敏状态,改善患者生存质量[12],且安全有效、治疗依从性好。指导教师硕博团队已形成隔药灸脐法治疗腹泻型肠易激综合征的临床规范化诊疗方案,依托山东省科技惠民计划在山东省内进行推广应用,以其简便廉效、绿色安全的特点,惠民范围广泛,并完成了技术转化示范,具有积极的社会意义。且多年来从血清脑肠肽[13]、神阙穴区与结肠组织肥大细胞及Toll样受体与TRPV受体的表达[14-15]等多方面探讨了隔药灸脐对IBS-D的作用机制,但尚未完全阐明其深层次机制。(具体详见研究基础)

2.肠屏障功能损伤和炎症反应是 IBS-D 的主要病理现象,调控炎症反应,减轻炎症介质对肠屏障损害是防治 IBS-D 的重要的策略。
肠道稳态的维持依赖于黏膜系统的多重协同防护机制,其中生物屏障通过菌群互作调控代谢平衡,化学屏障依赖黏液层形成抗菌隔离,免疫屏障借助免疫细胞网络实施精准防御,而机械屏障作为核心物理防线,由肠上皮细胞及其紧密连接蛋白复合体(如occludin、claudin家族)构成空间隔离体系[16-17]。临床研究提示,肠黏膜通透性异常升高是IBS-D等肠功能障碍的共性病理特征,这种屏障缺陷不仅促进微生物及其代谢产物易位,更会触发TLR/NF-κB等通路介导的异常免疫应答,形成"屏障损伤-炎症级联-二次损伤"的恶性循环[18-19]。值得注意的是,慢性低度炎症微环境中升高的TNF-α、IL-1β等促炎因子可通过下调ZO-1蛋白表达、重分布紧密连接锚定结构,显著增加肠上皮通透性,进而引发内脏高敏感性和动力紊乱等IBS-D核心症状[20-21]。因此,如何保护肠屏障功能,是减轻胃肠损害的关键问题,而通过调控炎症反应,减轻炎症介质对肠上皮细胞及细胞间紧密连接损害是防治 IBS-D 的重要的策略。

3.巨噬细胞极化可调控IBS-D肠道炎症与屏障损伤
巨噬细胞是肠道固有层中最常见的单核吞噬细胞,可塑性是巨噬细胞的一个特征,因此巨噬细胞能够对不断变化的微环境做出反应。根据巨噬细胞不同表型及其分泌的不同细胞因子,可分为 M1 型(经典激活)和 M2型(替代激活)两种极化类型[22]。M1型是促炎巨噬细胞,主要由脂多糖(LPS)及干扰素-γ(IFN-γ)激活,分泌肿瘤坏死因子-α(TNF-α)、白细胞介 素 (IL)-1β、IL-6、IL-12、IL-23 和 趋 化 因 子 (CXCL9)、趋化因10(CXCL10)等促炎细胞因子和趋化因子,主要起到促进炎症反应、吞噬等作用。M2型是抗炎巨噬细胞,主要由IL-4激活,分泌IL-10等抗炎细胞因子,在伤口愈合及组织修复等过程中起到重要作用[23]。
巨噬细胞极化是指巨噬细胞在不同刺激因子作用下,表现出不同功能表现形式的动态过程。调节巨噬细胞极化需要各种细胞因子、趋化因子和信号传导分子之间的相互作用。巨噬细胞根据环境变化激活不同表型,从而发挥相应的作用。驻留在肠壁组织中的巨噬细胞发挥着基本的功能,如吞噬凋亡或衰老的细胞、组织重塑等。其表达的清道夫受体如CD36可以结合和吞噬凋亡细胞。还可以产生多种细胞因子和可溶性因子来维持组织内环境的稳定[24]。然而伴随着微环境的不断改变,巨噬细胞极化为M1型和M2型,这两种表型的巨噬细胞在调节炎症反应的过程中通常可以相互转换。一旦巨噬细胞极化失衡,其产生的促炎细胞因子和抗炎细胞因子则失去平衡,就会引发和加剧IBS-D[25]。因此巨噬细胞极化可通过调控IBS-D肠道炎症与屏障损伤,引发IBS-D。

4.PI3K/AKT/HIF-1α信号通路介导糖酵解可驱动结肠巨噬细胞极化
磷脂酰肌醇-3激酶(PI3K)/丝氨酸苏氨酸激酶(AKT)信号通路是调节细胞生长过程的重要通路。该通路的异常活化不仅促进细胞异常生长、增殖、分化,而且介导糖酵解的发生。PI3K/AKT下游靶点是mTOR,mTOR诱导了许多参与有氧糖酵解基因的转录,其中就包括HIF-1α。PI3K/AKT信号通路能够增加细胞膜上葡萄糖转运体的表达和转位,增强细胞对葡萄糖的摄入、活化糖酵解关键酶,从而提高糖酵解效率[26]。
糖代谢重编程作为能量代谢的重要环节,参与人体众多生理病理过程,包括巨噬细胞分化和功能[27]。与癌细胞观察到的Warburg 效应类似,巨噬细胞在感知所处微环境变化时发生快速增殖,往往依赖于有氧糖酵解这种相对低效能的方式快速产生能量,并通过异常量的代谢中间体和代谢产物改变其表型特征而显著地极化为 M1 和 M2。研究发现在 LPS 和/或 IFN - γ 激活的 M1 型巨噬细胞中存在高效的糖酵解,包括 HK2、PFK1和PKM2 三种关键酶表达上升[28]。己糖激酶 2( HK2) 是控制糖酵解的第一个限速步骤,催化葡萄糖磷酸化为葡萄糖- 6 -磷酸。在PMA 诱导单核细胞分化中,细胞骨架结构蛋白的表达、CXCR4 的表达、吞噬作用、巨噬细胞表型的获取和促炎介质的释放均依赖于 HK2[29]。磷酸果糖激酶 1( PFK1) 是控制糖酵解的第二个限速步骤,2,6 - 二磷酸果糖是其变构激活剂,而 2,6 - 二磷酸果糖的水平取决于 PFKFB3 活性。在 LPS 和淀粉样蛋白 β 诱导骨髓来源巨噬细胞分化过程中,NLRP3 炎症小体可通过增加糖酵解酶PFKFB3 的活性促进 IL - 1β 的释放[30]。丙酮酸激酶 M2( PKM2)是控制糖酵解的最后一个限速步骤,将 1 个葡萄糖分子分解为 2个 ATP 分子和丙酮酸。在 LPS 诱导巨噬细胞中,PKM2 形成酶活性不高的二聚体或单体并进入细胞核并与 HIF - 1α 结合形成PKM2 - HIF - 1α 复合体,从而诱导促炎因子 IL - 1β 的分泌并引发炎症反应[31]。

5.PI3K/AKT/HIF-1α信号通路介导的结肠糖酵解-M1/M2极化轴为切入点,结合前期研究进一步阐释隔药灸脐法干预IBS-D的效应机制
现代医学尚未明确IBS-D的发病机制,肠屏障损伤和炎症反应是 IBS-D 的主要病理现象[32-33]。IBS-D 在内的多种肠道疾病的发生和发展中均伴随着肠黏膜屏障破坏,且肠黏膜屏障功能的缺陷能导致肠道对微生物群的免疫反应增强进而加剧肠道炎症反应,而肠道炎症反应也能进一步破坏肠黏膜的屏障功能[34-35]。前期预实验研究表明,HE染色结果显示隔药灸脐法可减轻IBS-D大鼠结肠组织炎性细胞浸润情况,增强肠道机械屏障,保护其结肠组织结构。Elisa实验结果显示隔药灸脐法可降低IBS-D大鼠血清中MPO、IL-1β、IL-18浓度,RT-qPCR实验结果显示隔药灸脐法可降低IBS-D大鼠结肠组织中IL-6、IL-1β、TNF-α的mRNA 表达,以上结果提示隔药灸脐法可缓解IBS-D大鼠的炎症反应。(详见研究基础)
在IBS-D中,肠道低度炎症微环境通过激活PI3K/AKT通路抑制HIF-1α的泛素化降解,促使HIF-1α入核后上调HK2等糖酵解关键酶表达,引发巨噬细胞代谢重编程;糖酵解爆发导致的乳酸堆积和NAD+/NADH失衡不仅直接驱动巨噬细胞向促炎M1表型极化(高分泌IL-1β、TNF-α),同时通过抑制AMPK/PPARγ信号阻碍抗炎M2极化,最终导致肠道屏障紧密连接蛋白(如ZO-1、occludin)降解和内脏高敏感性,形成“代谢-免疫-屏障”互作紊乱的核心病理特征。
综上所述,根据课题组前期临床及实验结果并结合相关文献研究,课题组提出科学假说:隔药灸脐法通过抑制PI3K/AKT/HIF-1α信号通路介导的巨噬细胞糖酵解代谢重编程,调控M1/M2极化平衡,进而减轻肠道炎症反应、修复肠屏障功能,最终改善IBS-D病理进程。
1.首次提出“隔药灸脐法-代谢重编程-巨噬细胞极化-肠屏障修复”的跨尺度调控网络,将传统中医外治法与现代代谢免疫学机制深度关联,突破当前IBS-D治疗研究多聚焦于单一靶点的局限性。
2.揭示“糖酵解-M1/M2极化轴”作为肠屏障免疫稳态调控的关键枢纽,为IBS-D的“代谢-免疫”交互机制提供新视角。
1.技术路线


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2.拟解决的问题
① 验证隔药灸脐法对IBS-D症状改善情况、结肠结构保护作用及对结肠屏障、炎症反应的影响
综合利用行为学、组织形态学、分子生物学进行隔药灸脐法对IBS-D症状改善情况、结肠结构保护作用及对结肠屏障、炎症反应的多角度验证,为机制探索提供证据。
②探讨糖酵解-M1/M2极化轴在隔药灸脐法效应机制中发挥的作用
采用流式细胞术、免疫荧光、酶联免疫吸附法、Western blot、RT-qPCR等分子生物学技术,从动物、分子水平,多维度研究糖酵解-M1/M2极化轴与在隔药灸脐法缓解 IBS-D 肠屏障损伤、炎症反应失衡的内在关系。
③ 探讨PI3K/AKT/HIF-1α信号通路在隔药灸脐法效应机制中发挥的作用
通过腹腔注射PI3K抑制剂抑制PI3K的表达,正向分析与反向验证相结合,分析各指标变化和相互间的关系及影响,探讨PI3K/AKT/HIF-1α信号通路在在隔药灸脐法效应机制中发挥的作用。

3.预期成果
①理论性研究成果
本项目在前期研究基础上,以结肠屏障、炎症反应为切入点,进一步明确隔药灸脐法通过抑制PI3K/AKT/HIF-1α信号通路介导的巨噬细胞糖酵解代谢重编程,调控M1/M2极化平衡,进而减轻肠道炎症反应、修复肠屏障功能,最终改善IBS-D病理进程。初步揭示了隔药灸脐法干预IBS-D的效应机制,为其临床应用与推广提供科学依据,具有重要的理论价值和临床意义。
②社会效益
隔药灸脐法操作简便、成本低廉,适合在基层卫生院推广,解决偏远地区IBS-D患者“看病难、用药贵”问题,助力健康中国战略与乡村振兴政策落地。
③学术交流、人才培养、成果转化
a.发表学术论文1~2篇;
b.参加国内外学术交流 1~2 次;
c.培养本科生4~6名。 

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1.与本项目有关的研究积累和已取得的成绩
①理论基础
IBS-D属中医泄泻的范畴,项目组前期以中国知网数据库、维普数据库、中国生物医学数据库、万方数据库为现代文献检索源,以中华医典为古代文献检索源,全面检索和整理泄泻古今外治文献,深入挖掘泄泻的外治用药规律,相关研究结果已发表核心期刊论文,为进一步推广应用IBS-D外治法提供依据。本研究所使用的药物处方为基于本数据挖掘精选的药物处方组合,以保证隔药灸脐法发挥最佳临床疗效。
②临床基础
a.隔药灸脐法在改善IBS-D患者大便泄泻、腹胀腹痛、肠鸣等症状方面疗效显著优于一线用药匹维溴铵,且安全性好(见图1);b.隔药灸脐法可降低IBS-D患者血清中SP、VIP和5-HT含量,减少消化道平滑肌收缩、胃肠蠕动、减弱痛觉信息的传递或者抑制结肠水、电解质的分泌, 在减少排便次数, 改善大便性状, 缓解腹痛或腹部不适等方面发挥治疗作用(见图2);c.隔药灸脐法调节的代谢物质更多,影响代谢的趋势更有利于抑制内脏高敏性,改善肠道神经、免疫、内分泌网络失调状况,缓解脾虚型IBS-D患者的临床症状,提高其生活质量。



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图2:GSRS主要终点及次要终点变化
(a)GSRS总分;(b)腹痛;(c)腹胀;(d)肠鸣;(e)排便次数增多;(f)稀便。Group HM:隔药灸脐组;Group FM:隔淀粉灸脐组;Group PB:匹维溴铵组。


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图2:两组患者治疗前后血清SP、VIP、5-HT含量变化情况。(注:*P<0.05)
③实验基础
参与山东省自然科学基金面上项目(基于 miR-let-7b-5p/MTDH/NF-κB 信号轴探讨隔药灸脐法缓解IBS-D 炎症反应的机制研究),已成功制备IBS-D模型大鼠(见图3),并对其进行隔药灸脐干预(见图4)。

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图3:大鼠造模前后精神状态、粪便和皮毛色泽变化图
A造模前;B造模3-4天;C造模7d

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图4:隔药灸脐操作图
通过比较治疗前后各组大鼠AWR评分(见图5),可知动物对肠道扩张刺激的反应减弱,疼痛减轻,表明隔药灸脐法和匹维溴铵均能改善IBS-D模型大鼠的内脏敏感性,缓解腹痛症状,起到治疗作用。


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   图5:治疗前后各组大鼠AWR评分
(注:与空白组相比,***P< 0.005,**P< 0.01,*P< 0.05;与模型组相比,▲▲▲▲ P< 0.0001,▲▲ P< 0.01,▲ P< 0.05)
大鼠结肠形态学观察可知,模型组大鼠的结肠粘膜表层上皮内淋巴细胞增多,炎性浸润,脐疗组及阳性组大鼠炎性减轻,说明隔药灸脐法和匹维溴铵均能降低IBS-D大鼠肠道炎症反应。(见图6)
此外, 经ELISA、qPCR、WB检测大鼠血清、结肠中炎症因子的结果表明,IBS-D模型大鼠造模成功;且隔药灸脐法和匹维溴铵均能有效缓解IBS-D模型大鼠的炎症反应。见图(7、8)
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图6:大鼠结肠组织HE染色


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图7:ELISA法检测血清、结肠中炎症分子含量
(注:与空白组相比,****P<0.0001,**P<0.01,*P<0.05;与模型组相比,####P<0.0001,###P<0.001,#P<0.05)

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图8:结肠中各分子mRNA及蛋白表达水平
(注:与空白组相比, **P< 0.05,与模型组相比, ^^P< 0.05)
依托单位实验室的软件、硬件设备具备完善的科研条件,所需试剂、抗体和药物均可购买。科研平台拥有分选式流式细胞仪、分析式流式细胞仪、活细胞工作站、普通和梯度PCR仪、荧光定量PCR仪、电泳仪、凝胶成像仪、倒置显微镜、免疫荧光倒置显微镜和成像系统、超净工作台、病理图像成像和分析系统等常规设备。实验动物中心拥有SPF级动物房(SYXK(鲁)20180002),为科研所需实验动物的饲养、繁殖提供了保障。平台和仪器设备能够为病理学、细胞和分子生物学等基础研究和应用提供有力保障。

经费预算

开支科目 预算经费(元) 主要用途 阶段下达经费计划(元)
前半阶段 后半阶段
预算经费总额 20000.00 5500.00 14500.00
1. 业务费 6000.00 500.00 5500.00
(1)计算、分析、测试费 3000.00 指标检测 500.00 2500.00
(2)能源动力费 0.00 0.00 0.00
(3)会议、差旅费 0.00 0.00 0.00
(4)文献检索费 0.00 0.00 0.00
(5)论文出版费 3000.00 发表论文 0.00 3000.00
2. 仪器设备购置费 0.00 0.00 0.00
3. 实验装置试制费 0.00 0.00 0.00
4. 材料费 14000.00 购买实验动物及耗材 5000.00 9000.00
结束