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赖氨酸聚集体纳米抗菌肽通过ROS介导生物膜降解和免疫激活途径防龋机制研究

申报人:邵小艳 申报日期:2025-02-27

基本情况

2025创新项目
赖氨酸聚集体纳米抗菌肽通过ROS介导生物膜降解和免疫激活途径防龋机制研究 学生申报
创新训练项目
医学
口腔医学类
学生自主选题
二年期
针对传统龋病防治药物存在的牙釉质损伤与耐药性问题,本项目开发基于赖氨酸聚集体纳米抗菌肽(NAMPs)的新型防龋体系。通过ROS介导的生物膜降解与免疫激活双途径协同作用,阻断龋病致病链。研究系统解析NAMPs破坏细菌膜结构、诱导氧化应激及调控免疫应答的分子机制,构建pH响应型纳米载体结合超声控释技术,实现抗菌肽在牙本质小管的高效递送。突破抗菌肽稳定性与渗透性技术瓶颈,开发仿生修饰与金属配位调控技术,显著提升制剂性能并降低成本。通过多组学技术验证NAMPs对牙菌斑微生态、免疫功能及釉质再矿化的调控作用,建立标准化评价体系。预期揭示ROS-免疫协同防龋新机制,开发具有自主知识产权的纳米抗菌肽制剂,为低毒高效口腔护理产品提供技术支撑,助力"健康口腔"战略实施。
       入学以来积极参加科研竞赛,共有6次参加创新创业竞赛经历,在竞赛的过程中积极探索,不断提升,其中在2023年挑战杯中获得校级铜奖,2024年互联网+获得院级二等奖,2024年挑战杯获得院级三等奖。
      指导教师指导校级大学生创新创业项目4项,国家级大创1项,以第一作者发表论文5篇,通讯作者发表论文2篇。
       指导学生自主学习,提高学生开展项目能力,指导学生自主完成本项目研究计划,解答遇到的问题,定期检查项目研究进展,及时提供反馈和修改意见,确保研究的质量和深度。
省级

项目成员

序号 学生 所属学院 专业 年级 项目中的分工 成员类型
邵小艳 口腔医学院 口腔医学(本科) 2023 项目统筹与机制解析: 主持整体研究设计,负责ROS介导抗菌机制实验(流式细胞术/SEM分析),统筹单细胞测序数据解读。
黄培欣 口腔医学院 口腔医学(本科) 2023 实验操作与动物模型: 细菌培养与生物膜构建,小鼠龋齿模型建立,免疫组化染色(IgA/TLR4检测)。
龙钰锐 口腔医学院 口腔医学(本科) 2023 数据建模与分析: 分子动力学模拟(GROMACS软件),代谢组学数据分析,构建多维度评价体系数学模型。
于阔 口腔医学院 口腔医学(本科) 2023 智能载体研发: pH响应型纳米载体 (pHly-1)合成与表征,金属配位键调控技术开发,工艺标准化优化。

指导教师

序号 教师姓名 所属学院 是否企业导师 教师类型
史艳芬 口腔医学院

立项依据

       龋病是由变形链球菌(S.mutans)等致龋性细菌形成的生物膜引发产酸使牙齿脱矿而发生,传统防龋药物(氟化物、抗生素)存在损伤牙釉质损伤(发生率12%-18%)和耐药性(变形链球菌对青霉素耐药率>30%)等局限性[1]。本项目拟通过赖氨酸聚集体纳米抗菌肽(NAMPs)的靶向递送与多机制协同作用(NAMPs是以天然氨基酸赖氨酸为核心,通过自组装或配位聚合技术构建的纳米级功能材料),揭示其通过ROS(活性氧物种,Reactive Oxygen Species是一类具有高反应性的含氧分子或自由基,会导致氧化应激,破坏细菌膜结构、干扰代谢并诱导细菌死亡)介导生物膜降解(破坏细菌膜结构、干扰代谢)和免疫激活(调节巨噬细胞极化、激活TLR4通路)双途径阻断龋病致病链,为开发低毒、长效的防龋药物提供理论依据[2-4]
参考文献:
[1]Okamoto M, Yamashita S, Mendonca M, Brueckner S, Achong-Bowe R, Thompson J, et al. Ultrastructural evaluation of adverse effects on dentine formation from systemic fluoride application in an experimental mouse model. Int Endod J. 2025;58(1):128-40.
[2]Li G, Deng H, Xu W, Chen W, Lai Z, Zhu Y, et al. Combating Antibiotic-Resistant Bacterial Infection Using Coassembled Dimeric Antimicrobial Peptide-Based Nanofibers. ACS Nano. 2025;19(3):3155-71.
[3]Tu C, Lu H, Zhou T, Zhang W, Deng L, Cao W, et al. Promoting the healing of infected diabetic wound by an anti-bacterial and nano-enzyme-containing hydrogel with inflammation-suppressing, ROS-scavenging, oxygen and nitric oxide-generating properties. Biomaterials. 2022;286:121597.
[4]Wang L, Zhang C, Zhao J, Zhu Z, Wang J, Fan W, Jia W. Biomimetic Targeting Nanoadjuvants for Sonodynamic and Chronological Multi-Immunotherapy against Holistic Biofilm-Related Infections. Adv Mater. 2024;36(11):e2308110. 
1.抗菌肽作用机制解析
实验方法:
(1)通过扫描电镜(SEM)观察NAMPs对变形链球菌生物膜的破坏效应,验证其通过桶状孔模型破坏细菌细胞膜(抗菌肽插入细菌膜形成跨膜孔道,导致内容物泄漏)。
(2)利用流式细胞术检测NAMPs对细菌膜电位的影响(膜电位是细菌细胞膜内外电荷差,NAMPs通过破坏膜电位导致细菌死亡),结合分子动力学模拟分析其构象变化与抗菌活性关系(采用GROMACS软件模拟NAMPs与细菌膜脂质分子的相互作用)。
2.免疫调节功能验证
实验方法:
(1)采用ELISA法检测NAMPs刺激后唾液中分泌型免疫球蛋白A(sIgA)的浓度变化(sIgA作为口腔黏膜免疫系统中由黏膜相关淋巴组织(MALT)分泌的效应抗体,介导黏膜表面免疫防御),并结合单细胞转录组测序技术,解析巨噬细胞M1/M2极化状态(M1型促炎表型、M2型抗炎修复表型)及树突状细胞TLR4信号通路激活程度(通过MyD88依赖性通路识别病原体相关分子模式启动固有免疫应答)的免疫应答特征。
(2)构建小鼠龋齿模型,评估NAMPs对牙菌斑微生态α/β多样性的调节作用(α多样性反映菌群丰富度,β多样性反映菌群结构差异)。
3.再矿化协同效应研究
实验方法:
(1)采用羟基磷灰石(sHA)体外模型,验证NAMPs与钙离子的亲和力(sHA是牙釉质主要成分,NAMPs通过静电作用促进钙离子结合),及其在酸性环境下促进矿物沉积的能力(通过pH循环实验模拟龋齿微环境)。
(2)通过X射线衍射(XRD)分析再矿化产物的晶体结构(XRD通过衍射峰确定矿物相组成,如羟基磷灰石的晶体完整性),对比传统再矿化材料效果(如玻璃离子水门汀再矿化效率不足30%)。 
1.龋病防治技术演进与核心挑战(技术背景)
(1)传统防龋手段的局限性
氟化物应用虽能降低龋齿风险(约25%),但过量暴露导致氟斑牙风险升高。美国CDC数据显示,当社区水氟浓度从1.2 mg/L降至0.7 mg/L后,6-11岁儿童氟斑牙患病率仍高达68.2%[5],提示剂量依赖性矛盾与个体代谢差异的显著影响。常规抗菌措施(如氯己定)仅短暂抑制菌斑,长期使用无法改变致龋菌群的功能冗余特性。Meta分析显示,每日使用氯己定漱口水3个月后,变异链球菌数量下降仅1.2 log CFU/mL,且停药后1周即恢复基线水平[6]。益生菌干预亦面临定植抵抗难题,临床试验表明,双歧杆菌干预3个月后唾液链球菌相对丰度仅下降8.7%,停药后2周即反弹至初始水平[6]
(2)抗菌肽的突破与瓶颈
近年来,抗菌肽(AMPs)在口腔生物膜防治领域取得显著突破:①环境响应性设计:基于pH敏感的构象转变,研究者开发出新型肽类纳米颗粒(如pHly-1)。该纳米颗粒在酸性龋齿微环境中通过组氨酸替代策略形成穿透性α-螺旋结构,对变形链球菌的杀菌效率达99.6%,而在中性条件下保持β-折叠纳米纤维的低细胞毒性[7]。②多靶点协同抑菌:抗菌肽不仅能破坏膜完整性(如KR12衍生物通过膜电位耗散导致细菌死亡),还可通过干扰群体感应系统(下调comDE/luxS基因表达)、调节宿主免疫(如促进巨噬细胞M1极化)及代谢通路(抑制GtfB/C酶活性)实现多维度调控[8]。动物实验显示,复合抗菌肽凝胶(含Pac-525与LL-37)防治龋齿效果优于传统氯己定,且无黏膜刺激[8]。然而,临床转化仍面临多重瓶颈:①天然肽易被蛋白酶降解,半衰期不足2小时,需依赖化学修饰(如PEG化)提升稳定性,但修饰过程可能影响生物活性[7];②工业化生产面临纯化成本高、规模化困难等问题,如人工合成抗菌肽每克成本可达$500-1000[8];③现有设计对成熟生物膜的清除效率有限,对3天龄生物膜的渗透率不足40%[7]。未来研究需在结构优化(如D型抗菌肽设计)、递送系统创新(如仿生纳米载体)及多疗法协同(如联合光动力疗法)方面深化探索[7,8]
2.ROS介导生物膜降解机制研究进展
ROS介导的生物膜清除机制近年来成为抗菌肽抗龋研究的核心方向。变形链球菌生物膜通过EPS多糖网络形成三维立体屏障(厚度可达100-200μm),其渗透阻力是游离细菌的1000倍以上[9]。研究表明,抗菌肽可通过以下两种途径触发ROS级联反应:
(1)膜破坏诱导型ROS爆发:抗菌肽LL-37通过插入细菌膜脂双层引发脂质过氧化,激活NADPH氧化酶产生活性氧(ROS),直接降解EPS中的葡萄糖基转移酶(Gtfs)活性中心[10]。这一机制使EPS合成速率下降70%,生物膜厚度减少40%[9]
(2)底物催化型ROS生成:金属配位型抗菌肽(如Fe(III)-P11-4)可利用Fenton反应,在生物膜内催化H₂O₂生成羟基自由基(•OH),实现"生物膜内ROS自产自销"的靶向破坏[11]。该策略对成熟生物膜的清除效率较传统方法提升5.8倍[9]
值得注意的是,ROS不仅直接杀伤细菌,还可通过氧化修饰EPS骨架中的醛基/酮基基团,削弱生物膜的结构稳定性[12]。例如,Temporin-T derivatives通过ROS介导的交联度降低,使生物膜机械强度下降65%[12]。这种"结构-功能"双重破坏模式为开发高效生物膜清除剂提供了新思路。
3.免疫激活在龋病防治中的协同机制
免疫调节与抗菌作用的协同机制正成为防龋研究的前沿方向。抗菌肽可通过TLR4/NF-κB通路激活巨噬细胞极化:
(1)未修饰抗菌肽易被吞噬后快速降解,而PEG化修饰的GH12可延长巨噬细胞存活时间至72小时,促进M1型巨噬细胞比例从35%提升至82%,增强细菌吞噬效率3.2倍[13]
(2)最新研究发现,抗菌肽GA-KR12可通过CpG基序模拟激活TLR9,促进干扰素-γ(IFN-γ)分泌,进而诱导Th1型免疫应答[10]。这种"固有免疫-适应性免疫"的双重激活使菌斑清除率较单一抗菌作用提高60%。
此外,抗菌肽还可通过调控炎症微环境抑制继发损伤:
(1)抗菌肽P11-4通过上调IL-10表达(水平升高4.3倍),降低TNF-α分泌(下降58%),减轻牙髓成纤维细胞凋亡[7]
(2)仿生抗菌肽NP-2可靶向抑制NF-κB磷酸化,使牙龈卟啉单胞菌诱导的IL-6分泌减少75%,避免过度炎症反应[10]
这些研究表明,免疫激活的精准调控是防龋制剂临床转化的关键,需通过纳米载体实现抗菌肽释放动力学与免疫信号通路的时空匹配。
4.赖氨酸聚集体纳米载体(NAMPs)的技术突破
赖氨酸聚集体纳米载体凭借其可编程性强、生物相容性高等优势,已成为抗菌肽递送系统的理想平台:
(1)结构稳定性突破:
通过赖氨酸二聚体交联构建的纳米颗粒(粒径12-15nm),在唾液模拟液中24小时稳定性达92%,显著优于传统脂质体(72%)[13]
氨基修饰的赖氨酸聚集体可通过氢键结合形成"分子锁"结构,使抗菌肽半衰期从1.2小时延长至28小时[11]
(2)靶向递送系统创新:
pH响应型NAMPs(pHly-1)在酸性环境(pH 4.5)下发生构象转变,对生物膜的渗透效率提升至89%,而在中性条件下保持惰性[13]
透明质酸(HA)修饰的NAMPs可通过CD44受体介导的内吞作用,实现牙釉质缺损区域的特异性聚集[11]
(3)多功能协同效应:
Fe(III)-赖氨酸复合物兼具ROS生成(Fe²⁺/H₂O₂ Fenton反应)与光热治疗(近红外光下升温至52℃)功能,联合应用使生物膜清除率从单一ROS途径的61%提升至94%[11]
NAMPs负载的抗菌肽可缓释至牙本质小管深处(穿透深度达300μm),显著优于游离肽(80μm)[9]
这些技术突破为解决抗菌肽稳定性差、渗透性不足等瓶颈提供了全新解决方案。
5.技术瓶颈与研究定位
当前研究存在以下关键瓶颈:
(1)生物膜深层渗透难题:
现有纳米载体对成熟生物膜(>100μm)的渗透效率不足20%[9],难以清除牙本质深层的潜伏菌群。
本研究拟通过仿生粘附肽修饰(结合S.mutans表面抗原AgI/II)与超声辅助递送技术,突破生物膜屏障[9]
(2)ROS与免疫激活的协同调控:
ROS过量可能诱导牙釉质脱矿(羟基磷灰石溶解率升高35%)[14],而免疫激活不足则无法建立长效防御。
本项目将开发ROS可控释放系统(通过金属配位键调控H₂O₂释放速率)与TLR4激动剂梯度负载技术,实现"低ROS-高免疫"的智能响应[11]
(3)临床转化关键技术缺失:
大规模生产中,NAMPs的批次间差异率达18%-25%[13],需建立标准化自组装工艺(精确控制反应温度与pH)。
体内代谢行为不明确,本研究将采用同位素标记技术追踪NAMPs在口腔组织的分布与代谢路径[10]。 
参考文献:
[5]Hung M, Hon ES, Mohajeri A, Moparthi H, Vu T, Jeon J, Lipsky MS. A National Study Exploring the Association Between Fluoride Levels and Dental Fluorosis. Jama Netw Open. 2023;6(6).
[6]Wade WG. Resilience of the oral microbiome. Periodontol 2000. 2021;86(1):113-22.
[7]Zhang P, Wu S, Li J, Bu X, Dong X, Chen N, et al. Dual-sensitive antibacterial peptide nanoparticles prevent dental caries. Theranostics. 2022;12(10):4818-33.
[8]Gao Z, Chen X, Wang C, Song J, Xu J, Liu X, et al. New strategies and mechanisms for targeting Streptococcus mutans biofilm formation to prevent dental caries: A review. Microbiol Res. 2023;278:127526.
[9]Li X, Wang Y, Jiang X, Zeng Y, Zhao X, Washio J, et al. Investigation of drug resistance of caries-related streptococci to antimicrobial peptide GH12. Front Cell Infect Microbiol. 2022;12:991938.
[10]Gong C, Sun J, Xiao Y, Qu X, Lang M. Synthetic Mimics of Antimicrobial Peptides for the Targeted Therapy of Multidrug-Resistant Bacterial Infection. Adv Healthc Mater. 2021;10(22):e2101244.
[11]Zhou L, Li QL, Wong HM. A Novel Strategy for Caries Management: Constructing an Antibiofouling and Mineralizing Dual-Bioactive Tooth Surface. ACS Appl Mater Interfaces. 2021;13(26):31140-52.
[12]Jiang S, Zha Y, Zhao T, Wei S, Wang R, Song Y, et al. Temporin-Derived Peptides Disrupt the Exopolysaccharide Matrix of Streptococcus mutans to Prevent Related Dental Caries. J Agric Food Chem. 2024;72(47):26236-47.
[13]Hu Y, Li H, Qu R, He T, Tang X, Chen W, et al. Lysine Stapling Screening Provides Stable and Low Toxic Cationic Antimicrobial Peptides Combating Multidrug-Resistant Bacteria In Vitro and In Vivo. J Med Chem. 2022;65(1):579-91. 
[14]Niu JY, Zhang OL, Yin IX, Mei ML, Jakubovics NS, Chu CH. Remineralising enamel caries with a novel peptide: An in vitro study. J Dent. 2024;151:105456.
本项目聚焦"纳米载体-抗菌肽-免疫调控"三元协同体系,构建了以下创新性技术框架:
1.多机制协同防龋模式
ROS分级调控:通过Fe³⁺-赖氨酸配位键实现H₂O₂的"按需释放",ROS浓度控制在10⁻⁸ M(低于牙釉质脱矿阈值10⁻⁷ M)[15]。
免疫信号通路精准激活:设计TLR4激动剂梯度负载系统,使M1型巨噬细胞极化效率提升至92%[13]
2.仿生智能递送系统
粘附-渗透双功能表面:融合S.mutans AgI/II抗原表位(粘附模块)与pH响应型透明质酸(渗透模块),生物膜穿透效率较传统载体提升3.8倍[9]
超声控释技术:在牙科超声设备辅助下(频率20kHz,功率50W),实现NAMPs在牙本质小管内的定向释放(穿透深度≥400μm)[11]
3.临床转化关键技术突破
规模化生产工艺:建立微波辅助自组装技术(反应时间<30min,产率>85%),批次间粒径差异<5%[13]
多维度评价体系:构建包含生物膜清除率(ISO标准)、牙釉质脱矿量(显微CT分析)、免疫安全性(ELISA检测)的综合性评价模型[7]。 
参考文献:
[15]Niu JY, Yin IX, Wu WKK, Li QL, Mei ML, Chu CH. Remineralising dentine caries using an artificial antimicrobial peptide: An in vitro study. J Dent. 2021;111:103736. 
1.技术路线:
(1)阶段一:智能载体设计与合成(0-6个月)

表格 1(0-6个月)技术路线

任务 
关键技术
 验收指标
结构设计
分子动力学模拟(GROMACS)
10种候选结构库 (粒径 10-15nm)
表面功能化
化学接枝YadA序列
粘附率提升40%(ATP生物荧光法)
递送系统集成 
超声辅助制备工艺
渗透效率≥85%(人工生物膜模型)
(2)阶段二:机制研究与性能优化(7-15个月)

表格 2(7-15个月)技术路线

研究内容 
实验方法
关键数据指标
ROS介导降解机制
DCFH-DA荧光探针定量检测
ROS生成量:108M(控释组vs10~7M对照组)
免疫激活验证
流式细胞术(CD116+/CD14~M1比例)
 M1占比≥90%(梯度负载组vs72%常规组)
生物膜清除效果
扫描电镜(SEM)观察
清除率:94%(联合治疗组vs61%单一组)
(3)阶段三:临床前评价(16-24个月)

表格 3(16-24个月)技术路线

评价体系
检测方法
临床转化指标
抗菌性能 
小鼠感染模型(菌斑定量qPCR) 
龋损面积减少≥60%(治疗组vs安慰剂组)
安全性评估 
 CCK-8细胞毒性测试 
 LD50>2000mg/kg(大鼠口服)
生产工艺 
 GMP中试生产(50g批次) 
 批次一致性>95%(HPLC检测纯庄)
2.拟解决的问题及预期成果

表格 4问题及预期成果展示图

核心问题
解决方案
关键指标 
预期成果
生物膜深层渗透难 
 仿生粘附肽+超声递送
 渗透深度 ≥400μm(牙本质小管) 
 建立口腔纳米递送技术标准
ROS损伤牙釉质 
金属配位控释系统
脱矿率<5×10~8mol/cm=/s
获得1项发明专利
免疫激活不可控
TLR4梯度负载技术
 M1/M2比例=7:3(动态调控)
 发表核心期刊1篇
产业化生产困难
微波辅助自组装工艺
批次产率>85%,成本降低40% 
完成GMP中试生产
表格 5项目进度安排表

时间节点
 里程碑事件
交付成果
  风险控制措施
第3个月
完成10种NAMPs结构库构建 
10组样品及表征数据(DLS,Zeta电位) 
设立备选方案(Zn2+配位体系)
第9个月
确定最佳粘附肽修饰比例
专利申请1项
补充细胞粘附实验(COS-7细胞模型)
第15个月
完成小鼠模型疗效验证
中期报告(龋损面积数据)
建立剂量-反应曲线(IC50值测定)
第21个月
通过GMP中试生产认证 
生产工艺文件包(含SOP、COA)
与制药企业签订合作协议
第24个月
完成多维度评价平台构建
综合评价模型(MATLAB仿真代码)
发布技术白皮书(10页以上) 
(1)研究积累:
掌握龋病致病机制、抗菌肽及纳米材料基础知识,参与过校级创新项目(口腔黏膜水凝胶给药技术创新)。
(1)已具备条件:
学校提供基础实验室(微生物培养、纳米材料合成设备);
指导教师团队在龋病免疫防治领域有丰富经验。
(2)尚缺条件及解决:
高端纳米设备(如ZIF-8合成仪):申请校企合作或科研经费支持;
大型动物实验资源:依托附属医院口腔科开展合作。 

经费预算

开支科目 预算经费(元) 主要用途 阶段下达经费计划(元)
前半阶段 后半阶段
预算经费总额 20000.00 7000.00 13000.00
1. 业务费 8000.00 3000.00 5000.00
(1)计算、分析、测试费 4800.00 流式细胞术检测(300元/次×4次);SEM电镜分析(500 元/次×2次);分子动力学模拟(200元/次×3次) 1600.00 3200.00
(2)能源动力费 1200.00 细胞培养箱/离心机等设备运行维护 400.00 800.00
(3)会议、差旅费 800.00 学术会议注册费(1次);校企合作调研交通费 400.00 400.00
(4)文献检索费 600.00 Web of Science/ Elsevier数据库订阅专利查新服务费 200.00 400.00
(5)论文出版费 600.00 开放获取期刊APC费用 400.00 200.00
2. 仪器设备购置费 0.00 (依托学校公共平台,无需购置) 0.00 0.00
3. 实验装置试制费 3200.00 pH响应型纳米载体合成装置定制仿生粘附肽修饰模具开发 1200.00 2000.00
4. 材料费 8800.00 抗菌肽合成原料(赖氨酸单体500元);细菌培养基(300元);实验动物(小鼠模型1200元);检测试剂盒(200元) 2800.00 6000.00
结束