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GGA3通过NLRP3- Caspase-1信号通路调控小胶质细胞IL-1β产生的机制研究

申报人:王新淼 申报日期:2025-02-11

基本情况

2025创新项目
GGA3通过NLRP3- Caspase-1信号通路调控小胶质细胞IL-1β产生的机制研究 学生申报
创新训练项目
医学
基础医学类
学生来源于教师科研项目选题
二年期
小胶质细胞是中枢神经系统的最主要免疫细胞,其分泌的炎症因子IL-1β在阿尔茨海默病及帕金森病等神经炎症相关疾病中发挥重要作用。然而IL-1β调控的具体分子机制尚不完全明确。本课题预实验发现GGA3在小鼠炎症模型中表达水平显著下降,且GGA3敲减显著降低小鼠脑内及小胶质细胞的IL-1β的产生。研究报道,NLRP3是调控IL-1β成熟和释放的关键分子。本项目进一步的研究发现,敲减GGA3表达水平可显著降低NLRP3及Caspase-1的表达,提示GGA3通过NLRP3- Caspase-1信号通路调控小胶质细胞IL-1β的产生。基于前期研究基础,基本项目将以GGA3敲除或过表达的小鼠和小胶质细胞为模型,采用RNA测序、细胞及分子生物学等方法明确GGA3调控IL-1β生成的新功能,阐明GGA3调控小胶质细胞IL-1β产生的分子机制,为炎症相关神经系统疾病的发病和药物研发提供新的理论基础。
   负责人曾作为主要成员参与校级大学生训练计划立项项目1项 ,目前参与指导老师主持的国家级和省级项目各1项,现阶段已熟练掌握神经炎症研究相关动物实验及细胞分子生物学的实验方法,如小鼠炎症模型的建立,实时荧光定量PCR(Quantitative Real-time PCR,qPCR),蛋白印迹(Western blotting)及细胞培养等。
(1)国家自然科学基金青年项目,“AIMP1激活炎症反应促进帕金森病中多巴胺神经元损伤的机制研究(82301629)”,2024.01-2026.12,主持,在研;
(2)山东省自然科学基金面上项目,“GGA3对神经炎症的调控及其在帕金森病中的作用研究(ZR2024MH129)”,2025.01-2027.12,主持,在研;
(3)山东省自然科学基金青年项目,“食欲素受体OX2R 促进黑质多巴胺神经元存活的机制研究(ZR2021QC039)”,2022.01-2024.12,主持,结题;
(4)山东省高等学校科技计划项目,“5-HT1AR-OX2R二聚体对海马神经元可塑性调控的研究(J18KA124)”,2018.07-2021.07,主持,结题;
(5)山东省医药卫生科技发展计划项目,“食欲素受体OX2R在帕金森病中的神经保护作用及其机制研究(202002081082)”,2021.01-2022.12,主持,结题;
(6)主持济宁医学院教师扶持项目等多项校级项目。 
  同意申报
省级

项目成员

序号 学生 所属学院 专业 年级 项目中的分工 成员类型
王新淼 精神卫生学院 精神医学(本科) 2022 蛋白印迹实验
倪颢格 精神卫生学院 精神医学(本科) 2024 细胞培养
隋伟豪 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科) 2023 PCR实验
马晓丹 临床医学院(附属医院) 临床医学(本科-临床医学院) 2022 细胞及动物模型建立

指导教师

序号 教师姓名 所属学院 是否企业导师 教师类型
王琴琴 精神卫生学院

立项依据

  小胶质细胞产生的炎症因子白细胞介素-1β (Interleukin-1 beta, IL-1β) 在阿尔茨海默病及帕金森病等神经退行性疾病发生发展发挥着重要作用,然而关于IL-1β产生的机制尚不完全明确。基于此,本项目将以高尔基体相关、含γ-衔接蛋白耳的ADP核糖基化因子结合蛋白3 (Golgi-localized, gamma adaptin ear-containing, ARF-binding protein 3, GGA3)敲除小鼠及原代小胶质细胞为模型,利用RNA测序、分子生物学及细胞生物学等实验方法,阐明GGA3调控IL-1β产生的新功能,揭示IL-1β产生的分子机制,为炎症相关神经系统疾病的发生发展及药物研究提供新的策略。
  为了探究GGA3在炎症反应过程中的具体作用,本项目主要通过以下两个方面展开研究:1)利用动物模型和细胞模型揭示GGA3IL-1β产生的调控作用;2)利用动物模型和细胞模型阐明GGA3通过NLRP3- Caspase-1信号通路调控IL-1β产生的分子机制。
  1)利用动物模型和细胞模型揭示GGA3IL-1β产生的调控作用;
  a. 取成年野生型对照小鼠和GGA3敲除小鼠,给予细菌脂多糖(Lipopolysaccharides, LPS)注射,利用Western blotting及免疫染色等实验方法检测小鼠小胶质细胞内IL-1β的表达水平。
  b. 取成年野生型小鼠通过注射病毒构建GGA3过表达小鼠模型,给予LPS注射,利用qPCR、Western blotting及免疫染色等实验方法检测小鼠小胶质细胞内IL-1β的表达水平。
  c. 培养对照组及GGA3敲除(或过表达GGA3)小鼠的小胶质细胞,给予LPS刺激,利用qPCR、Western blotting免疫染色及酶联免疫吸附测定 (Enzyme-Linked Immunosorbent Assay, ELISA) 等实验方法检测小胶质细胞内IL-1β的表达水平变化。
  2) 利用动物模型和细胞模型阐明GGA3通过NLRP3- Caspase-1信号通路调控IL-1β产生的分子机制。
  a. 取成年对照小鼠和GGA3敲除小鼠,给予LPS刺激,利用qPCR、Western blotting及免疫染色检测小鼠小胶质细胞的NLRP3Caspase-1的表达变化。
  b. 培养对照组及GGA3敲除小鼠的小胶质细胞,给予LPS刺激,一方面利用RNA测序分析GGA3敲除引起的小胶质细胞炎症反应的变化及相关信号通路的改变,一方面利用qPCR、Western blotting及免疫染色等实验方法检测小胶质细胞内NLRP3Caspase-1的表达水平及相关信号通路的变化。
  c. 培养野生型小鼠的小胶质细胞,加入siRNA或病毒转染过表达GGA3,给予LPS刺激和NLRP3- Caspase-1抑制剂,利用qPCR、Western blotting及免疫染色等实验方法检测小胶质细胞的IL-1βNLRP3Caspase-1的表达水平。 
  炎症是机体应对损伤、感染等有害刺激的一种复杂生物反应,对于维护机体健康至关重要[1]。正常生理条件下,炎症能够清除病原体和修复受损组织,是机体抵御外界威胁和自我修复的重要手段[2]。神经炎症是指中枢神经系统对感染、创伤或疾病等刺激产生的炎症反应。正常生理条件下,中枢神经系统中的免疫细胞处于相对静止状态,主要负责维持组织稳态、支持神经元功能以及参与免疫监视,有助于中枢神经系统发挥正常功能;当发生中枢神经系统损伤,感染或毒素刺激,某些自身免疫性疾病发生,蛋白错误折叠与聚集,如阿尔茨海默病的β-淀粉样蛋白 (amyloid β-protein,Aβ)斑块和tau蛋白缠结等病理原因,导致神经炎症的发生,造成神经元的损伤与凋亡、患者认知功能障碍、促进神经退行性疾病的发生发展,随着疾病的进展,还可能影响机体情绪调节过程。因此,更好地了解脑内炎症稳态地调控过程有助于为相关神经系统疾病治疗提供新思路。
  高尔基体相关、含γ-衔接蛋白耳的ADP核糖基化因子结合蛋白3 (Golgi-localized, gamma adaptin ear-containing, ARF-binding protein 3, GGA3)是一种参与细胞内运输和蛋白质分选的蛋白质,主要在高尔基体与溶酶体之间的膜蛋白运输过程中发挥关键作用[3]GGA3参与溶酶体酶前体的分选过程,保证相关酶能够在正确的细胞器内发挥其消化功能。研究发现,GGA3能够参与调控一种与阿尔茨海默病相关的酶β-分泌酶1(Beta-site amyloid precursor protein cleaving enzyme 1, BACE1)的细胞内转运与降解过程[4, 5]BACE1是生成的关键酶[6]的异常积累被认为是导致阿尔茨海默病患病的一个重要原因[7],提示其在阿尔茨海默病病理及其他神经退行性疾病病理过程中的潜在意义。本项目动物实验显示,LPS显著引起小鼠皮层、纹状体及海马脑区GGA3的表达水平降低(图1A-C),且敲减GGA3显著降低LPS引起的皮层、纹状体及海马脑区白细胞介素-1β (Interleukin-1 beta, IL-1β)的表达水平(图2A-C),提示GGA3调控脑内免疫稳态。上述结果提示GGA3调控脑内免疫稳态,因此,深入探究GGA3对脑内炎症调控的具体分子机制,对于炎症相关疾病的发病机制研究及治疗具有十分重要的意义。
  小胶质细胞在中枢神经系统中发挥着核心作用,与神经炎症的发生和发展密切相关,其不仅作为大脑的重要免疫防线,迅速响应病原体入侵和组织损伤,还通过多种机制维持神经元正常功能[8, 9]。小胶质细胞能够通过吞噬作用清除凋亡的神经元、突触碎片以及其他有害物质,减少局部炎症反应,促进受损区域的修复与再生,还具有修剪突触,动态感知周围微环境的变化等功能,维持中枢神经系统正常功能。小胶质细胞作为中枢神经系统最主要的免疫细胞,其在激活状态下能够分泌白细胞介素-1β,肿瘤坏死因子α,白细胞介素6,干扰素γ等多种促炎因子。其中IL-1β能够参与早期炎症反应、影响免疫细胞功能以及参与多种神经退行性疾病发生发展的病理过程[10],对维持神经免疫平衡至关重要,在中枢神经系统中扮演着关键的促炎因子角色。研究发现,长期或过度的IL-1β产生会导致慢性炎症,加剧神经元损伤并促进疾病进展[11]。然而小胶质细胞中IL-1β产生的具体调控机制尚不明确。因此,研究小胶质细胞中IL-1β调控的具体分子机制对于开发新的抗炎治疗方法具有重要意义。
  IL-1β最初以无活性的前体形式(pro-IL-1β存在,pro-IL-1β 需要通过NOD样受体热蛋白结构域相关蛋白3(NOD-like receptor thermal protein domain associated protein 3, NLRP3)炎症小体的激活来切割成IL-1β活性形式[12],通过特定机制被分泌出细胞发挥正常作用。研究发现, NLRP3炎症小体途径是参与调控IL-1β产生的重要信号通路,在IL-1β的成熟和释放过程中扮演了极其重要的角色。炎症小体是一种多蛋白复合物,主要包括NLRP3、含CARD结构的凋亡相关斑点样蛋白(Apoptosis-associated speck-like protein containing a CARD, ASC)和半胱天冬酶-1(Caspase-1)[13]NLRP3炎症小体的激活通常需要两个信号, 通常由 Toll 样受体或细胞因子受体触发启动信号,上调 NLRP3pro-IL-1β 的表达; 多种刺激包括腺嘌呤核苷三磷酸、尿酸晶体、病原体成分等物质触发激活信号导致 NLRP3 的寡聚化和炎症小体的组装[14]。在激活信号的作用下ASC发挥作用,激活Caspase-1,促使pro-IL-1β转化为有活性的IL-1β[13, 15], 导致促炎细胞因子的成熟与释放[16]。本项目动物实验发现,GGA3敲除显著降低小鼠脑内IL-1β的产生(图2A-C);细胞实验发现,LPS显著降低小胶质细胞中GGA3的表达水平(图3A-B),同时GGA3敲减显著降低小胶质细胞中IL-1β的产生(图5A-B),进一步的机制探索发现,GGA3敲减显著降低小胶质细胞中NLRP3Caspase-1的表达水平(图6A-B)。上述数据提示GGA3通过NLRP3-Caspase1调控小胶质细胞IL-1β的产生。
  综合目前的研究报道及前期实验基础,我们提出以下假说:GGA3通过NLRP3- Caspase-1信号通路调节小胶质细胞IL-1β的产生,进而调控脑内免疫稳态。本项目拟以GGA3敲除小鼠及原代小胶质细胞为模型,利用RNA测序、分子生物学及细胞生物学等方法揭示GGA3调控小胶质细胞产生IL-1β的分子机制,进一步完善炎症相关疾病的发病机理,为炎症相关疾病的发病机制和治疗提供新的理论依据。
参考文献:
[1]. Medzhitov, R., Origin and physiological roles of inflammation. Nature, 2008. 454(7203): p. 428-35.
[2]. Serhan, C.N. and J. Savill, Resolution of inflammation: the beginning programs the end. Nat Immunol, 2005. 6(12): p. 1191-7.
[3]. Puertollano, R. and J.S. Bonifacino, Interactions of GGA3 with the ubiquitin sorting machinery. Nat Cell Biol, 2004. 6(3): p. 244-51.
[4]. Tesco, G., et al., Depletion of GGA3 stabilizes BACE and enhances beta-secretase activity. Neuron, 2007. 54(5): p. 721-37.
[5]. Kang, E.L., et al., Ubiquitin regulates GGA3-mediated degradation of BACE1. J Biol Chem, 2010. 285(31): p. 24108-19.
[6]. Vassar, R., et al., Beta-secretase cleavage of Alzheimer's amyloid precursor protein by the transmembrane aspartic protease BACE. Science, 1999. 286(5440): p. 735-41.
[7]. Selkoe, D.J. and J. Hardy, The amyloid hypothesis of Alzheimer's disease at 25 years. EMBO Mol Med, 2016. 8(6): p. 595-608.
[8]. Nayak, D., T.L. Roth, and D.B. McGavern, Microglia development and function. Annu Rev Immunol, 2014. 32: p. 367-402.
[9]. Salter, M.W. and B. Stevens, Microglia emerge as central players in brain disease. Nat Med, 2017. 23(9): p. 1018-1027.
[10]. Heneka, M.T., M.P. Kummer, and E. Latz, Innate immune activation in neurodegenerative disease. Nat Rev Immunol, 2014. 14(7): p. 463-77.
[11]. Heneka, M.T., et al., Neuroinflammation in Alzheimer's disease. Lancet Neurol, 2015. 14(4): p. 388-405.
[12]. Dinarello, C.A., Interleukin-1 in the pathogenesis and treatment of inflammatory diseases. Blood, 2011. 117(14): p. 3720-32.
[13]. Martinon, F., K. Burns, and J. Tschopp, The inflammasome: a molecular platform triggering activation of inflammatory caspases and processing of proIL-beta. Mol Cell, 2002. 10(2): p. 417-26.
[14]. Kelley, N., et al., The NLRP3 Inflammasome: An Overview of Mechanisms of Activation and Regulation. Int J Mol Sci, 2019. 20(13).
[15]. Swanson, K.V., M. Deng, and J.P. Ting, The NLRP3 inflammasome: molecular activation and regulation to therapeutics. Nat Rev Immunol, 2019. 19(8): p. 477-489.
[16]. He, Y., H. Hara, and G. Núñez, Mechanism and Regulation of NLRP3 Inflammasome Activation. Trends Biochem Sci, 2016. 41(12): p. 1012-1021. 
1)该项目揭示了GGA3调控IL-1β产生的新功能。
2)该项目阐明GGA3通过NLRP3- Caspase-1信号通路调控小胶质细胞IL-1β产生的分子机制,为炎症相关疾病的发病机制和药物开发提供新的理论基础。 
技术路线:
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拟解决的问题:
1)本项目利用动物模型探究GGA3是否调控小胶质细胞IL-1β的产生。
2)本项目利用动物模型与细胞模型阐明GGA3通过NLRP3- Caspase-1通路调控小胶质细胞IL-1β产生的具体分子机制。 
预期成果:
GGA3可通过影响NLRP3- Caspase-1信号通路,进而调控小胶质细胞IL-1β的产生;本项目预期发表论文1-2篇。 
    2025.06-2025.12:繁育小鼠,培养GGA3敲除小鼠,过表达GGA3小鼠模型及对照小鼠,LPS注射处理,利用Western blottingqPCR及免疫染色等实验方法检测小鼠小胶质细胞内IL-1β表达水平以及NLRP3- Caspase-1表达水平的变化。
    2026.01-2026.06:培养GGA3敲除小鼠的小胶质细胞及对照组,同时利用病毒过表达小胶质细胞GGA3的表达,给予LPS处理,一方面利用RNA测序分析GGA3敲除引起的小胶质细胞炎症反应的变化及相关信号通路的改变,一方面利用Western blotting,qPCR、免疫染色及ELISA等实验方法检测小胶质细胞内IL-1βNLRP3Caspase-1表达水平及相关信号通路的变化。
    2026.07-2026.12:培养GGA3敲除小鼠的小胶质细胞及对照组,同时利用病毒过表达小胶质细胞GGA3的表达,给予LPSNLRP3Caspase-1抑制剂处理,利用Western blotting,qPCR、免疫染色及ELISA等实验方法检测小胶质细胞内IL-1β表达水平。
    2027.01-2027.06:分析实验数据,整理实验材料并撰写论文。 
与本项目有关的研究积累:
  结合国内外现有研究,为了探索GGA3是否参与炎症反应的调控,项目组成员利用LPS建立小鼠及细胞炎症模型,利用qPCR(图1A)及Western blotting(图1B)检测LPSGGA3表达水平的影响。结果显示,相对于对照组,LPS引起小鼠脑内GGA3表达水平显著下降,提示GGA3参与脑内炎症的调控过程中。
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1. LPS显著降低小鼠脑内GGA3的表达水平
LPS腹腔注射C57BL/6野生型小鼠(wild-type mouse , WT),建立炎症模型,一方面利用qPCR检测皮层,纹状体及海马区域GGA3表达水平(A);同时利用Western blooting检测小鼠脑内海马区域GGA3的表达水平(B-C)。其中蛋白大小单位为kDa
  为了进一步探究GGA3如何调控脑内炎症,项目组建立对照小鼠及GGA3敲除(GGA3 knockout,GGA3-/-小鼠的LPS炎症模型,利用qPCR实验(图2A-C)检测对照组及GGA3-/-小鼠大脑不同区域的GGA3IL-1β的表达水平。结果发现,相对于对照小鼠,GGA3在皮层、纹状体及海马区域的GGA3表达水平显著降低,说明GGA3敲除效果良好;IL-1β作为小胶质细胞介导神经炎症的关键炎症分子,其异常激活与多种神经退行性疾病的病理进程密切相关。因此,项目组检测LPS处理条件下,GGA3敲除对小鼠不同脑区IL-1β表达水平的影响,数据显示,IL-1βGGA3-/-组中表达水平显著下降,提示GGA3很有可能通过调控IL-1β的表达水平进而调控脑内炎症反应。
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2GGA3敲除显著降低小鼠脑内的IL-1β的表达水平
培养WTGGA3-/-小鼠,进行LPS腹腔注射建立炎症模型,利用qPCR检测皮层,纹状体及海马区域GGA3IL-1β的表达水平(A)。图(C)显示为图(B)的统计图。
  小胶质细胞目前被认为是脑内重要的免疫细胞,在脑内炎症调控中发挥关键作用,通过分泌IL-1β等促炎因子介导神经免疫应答,其活化状态直接影响神经炎症的起始、发展和消退。因此,项目组推测,GGA3很可能通过调控小胶质细胞介导的炎症反应参与脑内免疫状态。为了验证这一猜想,项目组成员培养小胶质细胞细胞系BV2细胞,利用LPS诱导处理建立炎症模型,采用免疫荧光染色检测GGA3的表达水平,结果发现,LPS显著降低小胶质细胞中GGA3的表达水平(图3A),统计结果同样显示(图3B),相对于对照组,GGA3LPS处理的小胶质细胞中表达水平显著下降。结合上述体内外实验结果,提示GGA3通过调控小胶质细胞介导的炎症反应进而调控脑内免疫稳态。
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3. LPS诱导处理的小胶质细胞GGA3表达水平显著降低
培养小胶质细胞,进行LPS处理,检测GGA3的表达水平。免疫染色检测LPS处理的小胶质细胞GGA3的表达水平(图A);图(B)显示为图(A)的统计图。
  为了探索GGA3是否参与调控小胶质细胞的炎症水平,项目组成员利用siRNA建立GGA3敲减的小胶质细胞,利用Western blotting检测siRNA引起的小胶质细胞GGA3的表达水平。实验数据显示,相对于siRNA-NC组,siRNA-GGA3小胶质细胞内GGA3表达水平显著下降(图4A-B),说明 GGA3敲减小胶质细胞模型成
立。
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图4. GGA3敲减效果良好
培养小胶质细胞,进行siRNA-NCsiRNA-GGA3的转染,检测GGA3的表达水平。Western blotting检测siRNA-NCsiRNA-GGA3组小胶质细胞GGA3的表达水平(A);(B)显示为(A)的统计图。其中蛋白大小单位为kDa
  为了探索GGA3是否能够通过调节小胶质细胞IL-1β的产生参与脑内免疫稳态的调控,项目组成员培养对照组和GGA3敲减组的小胶质细胞,采用LPS处理,利用Western blotting检测对照组和GGA3敲减组小胶质细胞IL-1β表达水平。实验数据显示,GGA3敲减显著降低LPS引起的小胶质细胞IL-1β的表达水平(图5A-B),提示GGA3调控小胶质细胞IL-1β的产生。
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5. GGA3敲减显著降低LPS引起的小胶质细胞IL-1β的表达水平
培养小胶质细胞,进行siRNA-NCsiRNA-GGA3的转染,检测GGA3的表达水平。Western blotting检测siRNA-NCsiRNA-GGA3组小胶质细胞GGA3IL-1β的表达水平(A);(B)显示为(A)的统计图。其中蛋白大小单位为kDa
  研究发现, NLRP3-Caspase-1信号通路在IL-1β产生过程中具有重要作用。因此,我们推测GGA3很可能通过调控NLRP3-Caspase1信号通路参与小胶质细胞IL-1β表达水平的调控,为了探究NLRP3-Caspase1信号通路是否参与GGA3调控小胶质细胞的IL-1β的调控,项目组成员培养对照组和GGA3敲减组小胶质细胞,LPS诱导处理,利用Western blotting检测NLRP3Caspase-1的表达水平,结果发现,GGA3敲减显著降低小胶质细胞中NLRP3(图6A)及Caspase-1的表达水平(图6B)。上述研究提示,GGA3通过NLRP3- Caspase-1信号通路调控小胶质细胞IL-1β的产生,为本项目的顺利进行奠定了理论基础。
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6. GGA3敲减显著降低LPS诱导的小胶质细胞中NLRP3 Caspase-1的表达水平
培养小胶质细胞,进行siRNA-NCsiRNA-GGA3的转染,检测NLRP3Caspse-1的表达水平。Western blotting检测siRNA-NCsiRNA-GGA3组小胶质细胞NLRP3的表达水平(A); Western blotting检测siRNA-NCsiRNA-GGA3组小胶质细胞Caspase-1的表达水平(B)。其中蛋白大小单位为kDa
已取得的成绩 :
  本项目组成员对本项目相关研究以及实验兴趣浓厚。项目团队成员由精神医学专业、临床医学专业学生组成,有利于各成员结合自身专业发挥自身优势。项目组成员已进入实验室进行一段时间的相关实验学习,能够熟练掌握如Western blotting、qPCR、细胞培养及立体定位等基础实验操作及项目相关实验技术,为项目的顺利发展奠定良好基础。团队合作经验高,成员相互协助,已联手协作多项课题研究。其中马晓丹与隋伟豪均为转专业临床学生,对生理学、 组织学与胚胎学及系统解剖学等基础课程知识掌握牢固,具有扎实的专业知识。王新淼和倪颢格为精神医学专业学生,对神经生物学、生物化学与分子生物学及神经病学等专业课程知识掌握良好,在精神疾病及相关神经系统疾病方面具有良好的知识背景。团队成员英语成绩良好,目前均已通过大学英语四级考试,为文献阅读及学习相关实验技能奠定坚实基础。此外,团队成员为跨年级跨专业本科生,能够合理安排实验并且提供多个角度解决问题;团队成员均曾获得校级奖学金及优秀学生等荣誉称号,其中负责人王新淼同学参与发表课题相关SCI论文1篇,马晓丹同学科研经历尤为丰富,以一作或参与成员发表课题相关SCI论文3篇。团队成员综合素质高,有利于项目研究的顺利开展。
  指导老师王琴琴毕业于中科院神经所,现为济宁医学院神经生物学副教授。曾担任 国家级、省级及校级大学生创新创业项目的指导老师,在指导学生进行科学研究训练方面积累了大量经验。指导教师目前主持国家级项目1项,省级项目2项,山东省教育厅等厅级项目4项及多项校级项目。指导教师以一作或通讯(含共同)发表在《BMC Medicine》 《Translational Neurodegeneration》及《Cells》等国际杂志SCI论文9篇,参与发表在《Cell Death and Disease》等国际期刊多篇 SCI论文。指导老师长期从事神经炎症相关疾病发病机制的研究,对神经炎症的研究已有扎实的理论基础并已熟练掌握相关实验技术,为本项目的顺利进行奠定良好基础。 
已具备的条件 :
  申请人所在的山东省精神医学研究院为山东省教育厅重点实验室。指导老师长期从事神经退行性疾病的发病机理研究,目前已经掌握本项目相关的理论基础和研究背景,能够对本项目研究起到关键指导作用。项目组成员现阶段已经熟练掌握Western blotting、qPCR、细胞培养及免疫染色等课题研究相关的实验技术。申请人所在的平台实验室设备齐全,能为本项目的研究提供实验所必备的实验仪器和设备如PCR扩增仪、qPCR仪、电转仪、电泳仪、低温高速离心机、立体定位注射仪、低温冷藏柜、细胞培养室、超净工作台等,该课题所使用的野生型小鼠目前正在繁育中。为本项目的研究顺利进展奠定了良好的基础。
尚缺少的条件:
  目前课题组成员虽已熟悉课题相关的理论知识及基本实验操作,但其中还存在一些细节问题,如稳定分析结果的准确性及阅读文献提取重点知识的能力需进一步加强。
解决方法:
  项目组成员会针对现有问题继续学习,解决细节问题,在做到查阅各种相关参考资料的基础上进行深度思考。项目组成员努力练习稳定分析实验成果,精进实验技术。 

经费预算

开支科目 预算经费(元) 主要用途 阶段下达经费计划(元)
前半阶段 后半阶段
预算经费总额 20000.00 项目经费 14800.00 5200.00
1. 业务费 7600.00 项目进行 5400.00 2200.00
(1)计算、分析、测试费 4000.00 样品分析 2500.00 1500.00
(2)能源动力费 0.00 0.00 0.00
(3)会议、差旅费 1000.00 出差会议 500.00 500.00
(4)文献检索费 400.00 文献检索 200.00 200.00
(5)论文出版费 2200.00 论文发表 2200.00 0.00
2. 仪器设备购置费 0.00 0.00 0.00
3. 实验装置试制费 0.00 0.00 0.00
4. 材料费 12400.00 耗材试剂购买 9400.00 3000.00
结束